| 第一章 引言 | 第1-22页 |
| 1．1 有机磷农药的使用现状及对环境的污染效应 | 第7-9页 |
| 1．2 有机磷农药污染物的主要处理技术路线 | 第9-12页 |
| 1．2．1 物理化学法 | 第9-10页 |
| 1．2．2 化学法 | 第10-11页 |
| 1．2．3 生化处理法 | 第11-12页 |
| 1．2．4 生化处理与物化处理方法结合的综合技术的研究 | 第12页 |
| 1．2．5 微生物与植物联合的生物修复技术 | 第12页 |
| 1．3 有机磷农药污染物生物修复技术的研究 | 第12-20页 |
| 1．3．1 高效降解有机磷农药微生物的分离和筛选研究进展 | 第13-17页 |
| 1．3．2 微生物对有机磷农药的降解与转化作用 | 第17-19页 |
| 1．3．3 有机磷农药生物修复的研究现状 | 第19-20页 |
| 1．4 本课题的立论依据 | 第20页 |
| 1．5 主要研究内容及创新之处 | 第20-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-27页 |
| 2．1 化学试剂 | 第22页 |
| 2．2 污泥样品采集 | 第22页 |
| 2．3 培养基 | 第22-23页 |
| 2．3．1 氧乐果无机盐培养基 | 第22页 |
| 2．3．2 富集培养基 | 第22页 |
| 2．3．3 种子培养基 | 第22页 |
| 2．3．4 选择培养基 | 第22-23页 |
| 2．3．5 预培养基 | 第23页 |
| 2．3．6 鉴定培养基 | 第23页 |
| 2．4 氧乐果降解菌的分离筛选与驯化 | 第23页 |
| 2．5 菌种的鉴定 | 第23页 |
| 2．6 纯菌株B_1的培养及其降解氧乐果的实验方法 | 第23-24页 |
| 2．6．1 纯菌株B_1分批培养实验方法 | 第23-24页 |
| 2．6．2 纯菌株B_1带连续补料的Fed-Batch培养实验方法 | 第24页 |
| 2．6．3 土壤中氧乐果降解实验方法 | 第24页 |
| 2．7 分析方法 | 第24-27页 |
| 2．7．1 氧乐果含量的测定方法 | 第24-25页 |
| 2．7．2 微生物菌体干重的测定方法 | 第25页 |
| 2．7．3 葡萄糖含量测定方法 | 第25-26页 |
| 2．7．4 GC-MS测定方法 | 第26页 |
| 2．7．5 土壤样品中氧乐果残留量的测定 | 第26-27页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第27-52页 |
| 3．1 高效降解氧乐果菌株的筛选 | 第27-30页 |
| 3．1．1 氧乐果降解菌株的富集与分离 | 第27页 |
| 3．1．2 耐高浓度氧乐果降解菌株的驯化与筛选 | 第27-28页 |
| 3．1．3 菌株的鉴定 | 第28-30页 |
| 3．2 曲霉B_1的菌体生长及其降解氧乐果特性的研究 | 第30-52页 |
| 3．2．1 pH对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第30-32页 |
| 3．2．2 温度对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第32页 |
| 3．2．3 氧乐果为唯一碳、氮、磷源时曲霉B_1的生长及其降解氧乐果活性的研究 | 第32-33页 |
| 3．2．4 添加不同易利用碳源对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第33页 |
| 3．2．5 不同营养源对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第33-36页 |
| 3．2．6 曲霉B_1在葡萄糖与氧乐果共存时的代谢特性 | 第36-37页 |
| 3．2．7 不同葡萄糖浓度对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第37-40页 |
| 3．2．8 不同氧乐果浓度对曲霉B_1生长及其降解氧乐果速率的影响 | 第40-43页 |
| 3．2．9 氧乐果降解中间产物及其累积效应分析 | 第43-45页 |
| 3．2．10 曲霉B1对土壤中氧乐果降解特性的研究 | 第45-52页 |
| 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 个人简历 | 第61页 |
