第一章 文献综述 | 第1-22页 |
·黄花菜的简介 | 第9页 |
·黄花菜化学成分研究 | 第9-10页 |
·黄酮类化合物的结构特征与应用 | 第10-12页 |
·黄酮类化合物的结构 | 第10-11页 |
·黄酮的应用 | 第11-12页 |
·黄酮类化合物的基本性质 | 第12-14页 |
·物理性质 | 第12-13页 |
·化学性质 | 第13-14页 |
·黄酮的提取与分离 | 第14-16页 |
·黄酮的提取 | 第14-15页 |
·黄酮类化合物的分离 | 第15-16页 |
·黄酮化合物的研究与利用现状 | 第16-17页 |
·黄酮类化合物对自由基的清除作用 | 第17-22页 |
·自由基的产生与人体健康的关系 | 第17-18页 |
·自由基的检测方法 | 第18-20页 |
·自由基的清除剂 | 第20-22页 |
第二章 超声波提取黄花菜中的黄酮 | 第22-32页 |
·实验材料药品与仪器 | 第22-23页 |
·实验材料药品 | 第22页 |
·实验仪器与设备 | 第22-23页 |
·黄花菜的提取 | 第23-26页 |
·提取溶剂的选择 | 第23页 |
·常规提取法 | 第23页 |
·超声波提取 | 第23页 |
·超声波提取与常规提取结果比较 | 第23-24页 |
·超声波提取因素对提取效果的影响 | 第24-26页 |
·超声波提取条件优化实验--正交实验 | 第26-29页 |
·正交实验 | 第26页 |
·正交实验结果 | 第26-29页 |
·最佳实验条件的确认 | 第29页 |
·干黄花菜中提取黄酮含量的测定 | 第29-30页 |
·标准曲线的绘制 | 第29-30页 |
·样品含量的测定 | 第30页 |
·小结 | 第30-32页 |
第三章 黄花菜中黄酮化合物的分离提纯与结构特征 | 第32-41页 |
·实验材料药品与仪器 | 第32-33页 |
·实验材料药品 | 第32页 |
·实验仪器与设备 | 第32-33页 |
·黄酮的分离与纯化 | 第33-34页 |
·黄酮的分离 | 第33-34页 |
·黄酮的纯化 | 第34页 |
·黄酮的高效液相色谱图 | 第34-36页 |
·标准品的配置 | 第34-35页 |
·样品液相色谱图 | 第35-36页 |
·黄花菜的化学见识法初步确定黄酮的结构 | 第36-37页 |
·实验结果分析 | 第37-38页 |
·荧光检识结果分析 | 第37页 |
·化学检验结果分析 | 第37页 |
·TLC结果分析 | 第37-38页 |
·黄花菜提取液的结构谱图 | 第38-40页 |
·黄酮的紫外光谱特征 | 第38页 |
·黄酮的红外光谱图 | 第38-40页 |
·小结 | 第40-41页 |
第四章 电化学法对黄花菜中黄酮的清除效果的测定 | 第41-57页 |
·实验药品试剂与仪器 | 第41页 |
·实验药品试剂 | 第41页 |
·实验仪器与设备 | 第41页 |
·实验部分 | 第41-43页 |
·实验方法 | 第41-42页 |
·实验条件 | 第42-43页 |
·提取样品极谱波的性质实验 | 第43-44页 |
·表面活性剂的影响 | 第43-44页 |
·循环伏安图 | 第44页 |
·黄酮对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第44-47页 |
·邻苯三酚的自氧化能力 | 第44-45页 |
·超氧阴离子自由基的产生体系模型 | 第45-46页 |
·芦丁与黄花菜提取液对O_2~((?))的清除作用 | 第46-47页 |
·黄酮对羟自由基的清除作用 | 第47-48页 |
·羟自由基的产生体系模型 | 第47页 |
·实验方法 | 第47-48页 |
·实验条件的选择 | 第48-51页 |
·酸度的影响 | 第48页 |
·维生素C的用量 | 第48-49页 |
·H_2O_2的用量 | 第49页 |
·Fe(Ⅲ)-EDTA的浓度 | 第49-50页 |
·DMSO的浓度与反应时间的选择 | 第50页 |
·乙酰乙酸乙酯的用量 | 第50-51页 |
·Hantzsch反应温度及反应时间的影响 | 第51页 |
·样品溶液对.OH的作用 | 第51-52页 |
·不同天然黄酮类化合物对O_2~((?))与.OH清除作用 | 第52-54页 |
·自由基清除能力与分子结构的关系 | 第54-56页 |
·几种植物的花叶与黄花菜对O_2~((?))与.OH清除作用的比较 | 第56-57页 |
第五章 结论 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
攻读硕士学位期间主要的研究成果 | 第65页 |