致谢 | 第1-4页 |
目录 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-45页 |
1 我国土壤中钾素状况 | 第11-12页 |
1.1 土壤中存在着巨大的供钾潜力 | 第11页 |
1.2 不同地区土壤供钾特性存在差异 | 第11-12页 |
2 钾与其它元素的反应 | 第12-16页 |
3 植物钾营养基因型的差异及其机理研究进展 | 第16-22页 |
3.1 植物基因型间钾营养的差异 | 第16-18页 |
3.2 钾营养基因型差异的形态特征及生理生化基础 | 第18-22页 |
3.3 小麦钾营养基因型差异研究 | 第22页 |
4 植物营养效率 | 第22-29页 |
4.1 植物养分效率概念 | 第22-23页 |
4.2 植物养分效率研究方法 | 第23-29页 |
5 植物钾吸收的分子水平研究 | 第29-41页 |
5.1 K~+通道与低亲和力K~+吸收 | 第29-32页 |
5.2 高亲和力转运体及高亲和力K~+吸收机制 | 第32-33页 |
5.3 K~+吸收动力学 | 第33-35页 |
5.4 K~+吸收的调节 | 第35-38页 |
5.5 H~+-ATP酶与K~+吸收的关系 | 第38-40页 |
5.6 K~+-ATP酶 | 第40页 |
5.7 K~+营养的分子研究展望 | 第40-41页 |
6 质膜氧化还原系统 | 第41-45页 |
6.1 植物细胞质膜氧化还原系统的组成 | 第42页 |
6.2 质膜氧化还原酶 | 第42-43页 |
6.3 质膜氧化还原系统与营养吸收 | 第43-45页 |
第二章 引言 | 第45-51页 |
1 论题的研究意义、国内外研究现状 | 第45-46页 |
2 研究方案 | 第46-49页 |
3 初步筛选结论 | 第49-50页 |
4 用于第2年研究的品种确定 | 第50-51页 |
第三章 材料与方法 | 第51-62页 |
1 供试材料 | 第51页 |
2 试验设计 | 第51-62页 |
2.1 试验设置 | 第51-53页 |
2.2 麦苗培养与管理 | 第53-54页 |
2.3 测定方法 | 第54-62页 |
第四章 不同基因型小麦营养吸收与生长的水培研究 | 第62-77页 |
1 不同钾浓度处理下不同基因型生长特性 | 第62-64页 |
1.1 不同钾浓度下各品种生长参数比较 | 第62-64页 |
1.2 平均生长速率 | 第64页 |
2 温室自然生长条件下原位观测各品种养分吸收动态 | 第64-68页 |
2.1 各品种饥饿状态下对钾的吸收 | 第64-67页 |
2.2 各品种正常培养条件下对钾的吸收 | 第67-68页 |
3 不同品种小麦钾吸收动力学研究 | 第68-77页 |
3.1 不同K水平不同品种小麦K吸收动力学研究 | 第69-72页 |
3.2 吸钾与质子外排的关系 | 第72-75页 |
3.3 讨论 | 第75-77页 |
第五章 不同基因型小麦吸钾用钾及与其它营养元素互作特性研究 | 第77-95页 |
1 不同钾水平对小麦不同基因型生物量和氮磷钾吸收的影响 | 第77-87页 |
1.1 不同基因型小麦不同钾水平下各器官生物量与钾养分效率 | 第77-80页 |
1.2 钾对植株生物量和氮磷钾吸收的影响 | 第80-85页 |
1.3 不同钾水平下不同基因型K的利用效率变化和K响应 | 第85-87页 |
2 成熟期不同品种高低钾条件下各器官养分浓度分配 | 第87-91页 |
3 讨论 | 第91-95页 |
第六章 不同基因型小麦根质膜氧化还原系统 | 第95-112页 |
1 小麦幼苗根系质膜三个氧化还原酶试验研究 | 第96-99页 |
1.1 NAD(P)H氧化酶 | 第96-97页 |
1.2 NAD(P)H-Fe(CN)_6~(3-)/-Fe~(3+)螯合物还原酶 | 第97-99页 |
2 缺钾培养条件下小麦根质膜的氧化还原酶特性 | 第99-104页 |
2.1 缺钾胁迫条件下小麦根质膜NADH氧化酶活性 | 第100-102页 |
2.2 缺钾胁迫条件下小麦根质膜Fe(CN)_6~(3-)还原速率 | 第102-103页 |
2.3 K胁迫条件下根质膜EDTA-Fe~(3+)还原速率 | 第103-104页 |
3 小麦新鲜根系的氧化还原特性 | 第104-112页 |
3.1 新鲜根系还原Fe(CN)_6~(3-)速率 | 第104-105页 |
3.2 根系铁氰化钾还原与H~+分泌 | 第105-106页 |
3.3 小麦新鲜根系铁氰化钾还原与吸收K~+的关系 | 第106-108页 |
3.4 小麦根中Fe(CN)_6~(3-)还原引起的K~+、H~+和e~-等三种跨膜迁移物质的量及其比例 | 第108-110页 |
3.5 讨论 | 第110-112页 |
第七章 不同基因型小麦根ATP酶及质膜H~+-ATP酶的活性与电泳分析 | 第112-124页 |
1 小麦幼苗根质膜及不同K水平培养的小麦根质膜H~+-ATP酶活性 | 第112-117页 |
1.1 小麦幼苗根质膜H~+-ATP酶活性 | 第112-114页 |
1.2 不同K水平培养的小麦根质膜H~+-ATP酶活性 | 第114-115页 |
1.3 讨论 | 第115-117页 |
2 不同基因型小麦根内ATP酶及质膜ATP酶的电泳分析 | 第117-124页 |
2.1 K胁迫与K充足条件下生长35d的小麦根ATP酶和可溶性蛋白电泳 | 第117-119页 |
2.2 小麦幼苗根和叶中可溶性蛋白及ATP酶电泳 | 第119-121页 |
2.3 讨论 | 第121-124页 |
第八章 结论与讨论 | 第124-138页 |
1 结论与讨论 | 第124-134页 |
1.1 不同K水平下各品种的生长特性 | 第124-125页 |
1.2 不同基因型不同钾状况对外部钾吸收动态 | 第125页 |
1.3 不同基因型吸钾动力学参数 | 第125-126页 |
1.4 小麦根系吸钾与质子外排的关系 | 第126页 |
1.5 不同基因型小麦的钾效率 | 第126-127页 |
1.6 不同基因型小麦的K与N、P吸收特性 | 第127-129页 |
1.7 不同基因型小麦根质膜三个氧化还原酶特性 | 第129-131页 |
1.8 不同基因型小麦根质膜H~+-ATP酶活性及电泳 | 第131-134页 |
1.9 9个基因型小麦钾效率的总体计价 | 第134页 |
2 本论文创新之处 | 第134-136页 |
3 有待于开展的研究 | 第136页 |
4 展望 | 第136-138页 |
参考文献 | 第138-154页 |
英文摘要 | 第154-156页 |
作者简介 | 第156页 |