| 致谢 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| 1. 文献综述 | 第9-19页 |
| ·植物组织培养 | 第9页 |
| ·植物组织培养的发展概况 | 第9-14页 |
| ·理论基础和科学实践 | 第9-11页 |
| ·植物组织培养的意义 | 第11-12页 |
| ·植物组织培养的应用 | 第12-14页 |
| ·小麦组织培养 | 第14-17页 |
| ·影响小麦组织培养的因素 | 第14-16页 |
| ·小麦愈伤组织的类型和植株再生途径 | 第16-17页 |
| ·植物氮代谢的研究进展 | 第17-19页 |
| ·植物对氮的同化 | 第17-18页 |
| ·硝态氮的生理作用 | 第18页 |
| ·硝态氮代谢与植物组织培养 | 第18-19页 |
| 2 引言 | 第19页 |
| 3 材料和方法 | 第19-24页 |
| ·小麦成熟胚 | 第19页 |
| ·培养基 | 第19-20页 |
| ·方法 | 第20-24页 |
| ·胚性愈伤组织的诱导与筛选 | 第20-21页 |
| ·愈伤组织诱导 | 第20-21页 |
| ·不同培养基的诱导效果试验 | 第21页 |
| ·基因型筛选试验 | 第21页 |
| ·愈伤组织诱导的变温处理方法 | 第21页 |
| ·胚性愈伤组织继代维护方法研究 | 第21页 |
| ·分化诱导前的愈伤组织处理方法 | 第21-22页 |
| ·滤纸吸湿干燥处理 | 第22页 |
| ·震荡洗脱培养+吸湿干燥处理 | 第22页 |
| ·直接分化处理(CK) | 第22页 |
| ·小麦成熟胚脱分化过程中硝态氮的测定 | 第22-23页 |
| ·酶提取液和硝态氮含量测定提取液制备 | 第22页 |
| ·亚硝酸还原酶活性（Nitrite Redactase Activity，NiRA)测定 | 第22-23页 |
| ·硝酸还原酶活性(Nitrate Redactase Activity，NRA)测定 | 第23页 |
| ·NO_3~-、NO_2~-含量测定 | 第23页 |
| ·愈伤组织长期继代与生长、分化及硝态氮测定 | 第23-24页 |
| ·长期继代愈伤组织生长和分化 | 第23-24页 |
| ·长期继代愈伤组织硝态氮代谢特性测定 | 第24页 |
| 4 结果与分析 | 第24-48页 |
| ·胚性愈伤组织的诱导与筛选 | 第24-30页 |
| ·培养基对小麦成熟胚愈伤组织的诱导效应 | 第24-28页 |
| ·基因型的筛选 | 第28页 |
| ·变温处理对愈伤组织诱导的影响 | 第28-30页 |
| ·胚性愈伤组织继代维护方法研究 | 第30-34页 |
| ·不同培养基交替继代模式对愈伤组织生长量的影响 | 第30-31页 |
| ·不同交替继代培养模式对胚性愈伤率的影响 | 第31-33页 |
| ·不同交替继代培养模式对再生率的影响 | 第33-34页 |
| ·植株高效再生方法研究 | 第34-37页 |
| ·不同分化前处理对愈伤组织再生率的影响 | 第34-35页 |
| ·吸湿干燥对植株再生进程的影响 | 第35-37页 |
| ·不同处理对愈伤组织生根的影响 | 第37页 |
| ·硝态氮代谢对小麦成熟胚脱分化的影响 | 第37-40页 |
| ·小麦成熟胚诱导愈伤组织的诱导反应 | 第37-38页 |
| ·细胞NO_3~-盐含量和硝酸还原酶活性（NRA） | 第38-40页 |
| ·细胞NO_2~-含量和亚硝酸还原酶活性（NiRA） | 第40页 |
| ·愈伤组织长期继代与生长、分化及硝态氮代谢 | 第40-48页 |
| ·长期继代培养对胚性愈伤率的 | 第40-42页 |
| ·长期继代培养对愈伤组织幼苗再生率的影响 | 第42-44页 |
| ·长期继代培养细胞中 NO_3~-含量和硝酸还原酶活性(NRA) | 第44-46页 |
| ·长期继代培养细胞中 NO_2~-含量和亚硝酸还原酶活性(NiRA) | 第46-48页 |
| 5 结论与讨论 | 第48-53页 |
| ·关于培养基成分对诱导效果的影响 | 第48页 |
| ·关于温度对诱导效果的影响 | 第48-49页 |
| ·基因型对愈伤组织脱分化和分化的影响 | 第49页 |
| ·继代模式对愈伤组织质量的影响 | 第49-50页 |
| ·干燥促进愈伤组织植株再生的机理 | 第50-51页 |
| ·硝态氮对小麦成熟胚愈伤组织诱导效应的影响 | 第51页 |
| ·硝态氮及其酶活性在继代培养过程中的变化 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 英文摘要 | 第60-62页 |
| 附图 | 第62-63页 |
