| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 1 引言 | 第13-26页 |
| ·花生的起源及分类 | 第13页 |
| ·作物遗传育种中常用的分子标记技术 | 第13-16页 |
| ·RFLP 的原理、方法及其特点 | 第13-14页 |
| ·RAPD 的原理、方法及其特点 | 第14页 |
| ·SSR 的原理、方法及其特点 | 第14-15页 |
| ·AFLP 的原理、方法及其特点 | 第15-16页 |
| ·分子标记在花生中的应用研究 | 第16-22页 |
| ·花生属的亲缘关系研究 | 第16-18页 |
| ·栽培种花生DNA 多态性研究 | 第18-20页 |
| ·花生遗传图谱的构建 | 第20页 |
| ·花生分子标记研究进展 | 第20-22页 |
| ·数量性状基因（QTL）定位方法 | 第22-24页 |
| ·单标记分析法 | 第22-23页 |
| ·区间作图法 | 第23页 |
| ·复合区间作图法 | 第23-24页 |
| ·基于混合线性模型的复合区间作图法 | 第24页 |
| ·花生QTL 研究进展 | 第24-25页 |
| ·本研究的目的意义 | 第25-26页 |
| 2 试验材料和方法 | 第26-34页 |
| ·试验材料 | 第26-27页 |
| ·试验材料 | 第26页 |
| ·花生SSR 引物的来源 | 第26-27页 |
| ·试剂和仪器 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·试验方法 | 第27-30页 |
| ·F2 群体的构建 | 第27页 |
| ·田间性状调查 | 第27-28页 |
| ·室内考种标准 | 第28页 |
| ·DNA 提取及检测技术 | 第28-30页 |
| ·DNA 提取方法 | 第28-29页 |
| ·DNA 检测及测定 | 第29-30页 |
| ·SSR 反应体系及PCR 反应条件 | 第30页 |
| ·6.0%变性聚丙稀酰胺凝胶电泳技术 | 第30-32页 |
| ·变性胶的制备 | 第30-31页 |
| ·PAGE 电泳技术 | 第31页 |
| ·银染技术 | 第31-32页 |
| ·试验设计 | 第32-33页 |
| ·数据的统计及分析 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-50页 |
| ·79266 和04D893 的主要农艺性状的比较 | 第34页 |
| ·质量性状的比较分析 | 第34页 |
| ·数量性状的比较 | 第34页 |
| ·变异性状的遗传力分析 | 第34-35页 |
| ·变异性状的相关性分析 | 第35-36页 |
| ·变异性状在F2 群体中分离情况 | 第36-37页 |
| ·F2 群体变异性状频次分布图 | 第37-41页 |
| ·变异性状相关基因的SSR 分析 | 第41-50页 |
| ·花生SSR 反应体系的建立 | 第41-46页 |
| ·基因组DNA 的纯度检测 | 第41-42页 |
| ·Mg2+浓度对SSR 扩增效果的影响 | 第42页 |
| ·dNTP 浓度对SSR 扩增效果的影响 | 第42页 |
| ·Taq 酶浓度对SSR 扩增效果的影响 | 第42-43页 |
| ·模板DNA 浓度对SSR 扩增效果的影响 | 第43页 |
| ·引物浓度对SSR 扩增效果的影响 | 第43-44页 |
| ·退火温度对SSR 扩增效果的影响 | 第44-45页 |
| ·体系优化前后SSR 扩增结果的比较 | 第45-46页 |
| ·79266 和04D893 多态性引物的筛选 | 第46页 |
| ·多态性引物在群体中的扩增结果 | 第46-47页 |
| ·分子连锁图谱的构建 | 第47-48页 |
| ·变异性状的QTL 分析 | 第48-50页 |
| ·变异性状的复合区间分析 | 第48-49页 |
| ·变异性状的单标记分析 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-54页 |
| ·DNA 的提取方法的探讨 | 第50-51页 |
| ·影响花生SSR-PCR 反应扩增效果的因素分析 | 第51页 |
| ·试验所选用SSR 引物扩增效果的分析 | 第51-52页 |
| ·花生相关性状基因的分子标记 | 第52-53页 |
| ·花生SSR 引物的开发 | 第53页 |
| ·特大果花生新种质04D893 的利用前景 | 第53-54页 |
| 5 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 附录 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第68页 |