| 致谢 | 第1-16页 |
| 缩写词 | 第16-20页 |
| 摘要 | 第20-24页 |
| Abstract | 第24-30页 |
| 前言 | 第30-34页 |
| 1 文献综述 | 第34-60页 |
| ·山药研究进展 | 第34-37页 |
| ·山药地下块茎的化学成分 | 第34-35页 |
| ·山药地下块茎的营养功能 | 第35页 |
| ·山药的起源与分布 | 第35-36页 |
| ·山药种质资源与分类 | 第36-37页 |
| ·植物种质资源分类的研究方法 | 第37-40页 |
| ·蛋白质标记 | 第38页 |
| ·DNA分子标记 | 第38-40页 |
| ·RFLP标记 | 第38页 |
| ·RAPD标记 | 第38-39页 |
| ·SCAR标记 | 第39页 |
| ·AFLP标记 | 第39页 |
| ·SSR标记 | 第39页 |
| ·CAPS标记 | 第39-40页 |
| ·SRAP标记 | 第40页 |
| ·植物糖类化合物研究进展 | 第40-52页 |
| ·植物糖类化合物的分类 | 第40页 |
| ·植物糖类化合物的生物学功能 | 第40-41页 |
| ·植物糖类化合物的制备和分析 | 第41-42页 |
| ·蔗糖-淀粉的转化及其调控 | 第42-52页 |
| ·蔗糖的输入 | 第44-45页 |
| ·蔗糖的裂解 | 第45-47页 |
| ·淀粉的合成 | 第47-52页 |
| ·植物酚类化合物研究进展 | 第52-58页 |
| ·植物酚类化合物的分类 | 第52-53页 |
| ·植物酚类化合物的生物学功能 | 第53-54页 |
| ·在植物中的生理功能 | 第53-54页 |
| ·在人和动物中的营养功能 | 第54页 |
| ·植物酚类化合物的制备和分析 | 第54-56页 |
| ·植物酚类化合物的生物合成 | 第56-58页 |
| ·水杨酸的生理效应与应用 | 第58-60页 |
| ·水杨酸的生理效应 | 第58-59页 |
| ·水杨酸在农业生产的应用 | 第59-60页 |
| 2 山药不同基因型遗传多样性比较与分类 | 第60-80页 |
| ·材料与方法 | 第61-67页 |
| ·植物材料 | 第61页 |
| ·基于山药形态特征的分析 | 第61-62页 |
| ·山药形态特征的观察 | 第61-62页 |
| ·数据处理和 UPGMA聚类分析 | 第62页 |
| ·基于块茎可溶性蛋白质的分析 | 第62-63页 |
| ·样品的采集 | 第62页 |
| ·上样液的制备 | 第62页 |
| ·可溶性蛋白的SDS-PAGE分析 | 第62-63页 |
| ·数据处理和UPGMA聚类分析 | 第63页 |
| ·基于SRAP分子标记的分析 | 第63-67页 |
| ·样品的采集 | 第63-64页 |
| ·DNA的制备 | 第64-65页 |
| ·SRAP多态性分析 | 第65-66页 |
| ·数据处理和UPGMA聚类分析 | 第66-67页 |
| ·结果与分析 | 第67-76页 |
| ·基于形态学标记的分类 | 第67-72页 |
| ·山药的主要形态特征 | 第67-71页 |
| ·UPGMA聚类分析 | 第71-72页 |
| ·基于可溶性蛋白多态性的分类 | 第72-73页 |
| ·基于SRAP分子标记多态性的分类 | 第73-76页 |
| ·基因组DNA的提取和检测 | 第73-74页 |
| ·SRAP分子标记多态性和分类 | 第74-76页 |
| ·讨论 | 第76-80页 |
| 3 山药地下块茎糖类物质形成的基因型比较 | 第80-108页 |
| ·材料与方法 | 第81-88页 |
| ·植物材料和取样 | 第81页 |
| ·糖类化合物提取液的制备 | 第81页 |
| ·糖类化合物的测定 | 第81-83页 |
| ·总可溶性糖 | 第81-82页 |
| ·总还原糖 | 第82页 |
| ·葡萄糖 | 第82页 |
| ·果糖 | 第82-83页 |
| ·蔗糖 | 第83页 |
| ·总可溶性多糖 | 第83页 |
| ·不溶性糖类物质的测定 | 第83-85页 |
| ·总淀粉 | 第83-84页 |
| ·直链淀粉和支链淀粉 | 第84页 |
| ·抗性淀粉和可消化淀粉 | 第84-85页 |
| ·纤维素 | 第85页 |
| ·粗酶液的制备 | 第85-86页 |
| ·相关酶活性的测定 | 第86-87页 |
| ·转化酶 | 第86页 |
| ·蔗糖合成酶 | 第86页 |
| ·腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶 | 第86-87页 |
| ·淀粉合成酶 | 第87页 |
| ·淀粉分支酶 | 第87页 |
| ·数据统计分析与作图 | 第87-88页 |
| ·结果与分析 | 第88-105页 |
| ·地下块茎干物质积累的基因型比较 | 第88-89页 |
| ·地下块茎可溶性糖含量的基因型比较 | 第89-94页 |
| ·地下块茎淀粉和纤维素的基因型比较 | 第94-98页 |
| ·地下块茎蔗糖裂解相关酶活性的基因型比较 | 第98-100页 |
| ·地下块茎淀粉合成相关酶活性的基因型比较 | 第100-105页 |
| ·讨论 | 第105-108页 |
| 4 山药蔗糖-淀粉转化关键酶基因cDNA序列的克隆与分析 | 第108-138页 |
| ·材料与方法 | 第109-117页 |
| ·植物材料与取样 | 第109页 |
| ·主要试剂 | 第109页 |
| ·总RNA的提取与检测 | 第109-110页 |
| ·双链cDNA的合成 | 第110-111页 |
| ·第一链cDNA的合成 | 第110-111页 |
| ·cDNA的LD-PCR扩增 | 第111页 |
| ·基因中间cDNA序列的获得 | 第111-112页 |
| ·基因中间特异片段获得的引物设计和PCR扩增 | 第111页 |
| ·紫小SuSy基因3’和5’端序列的引物设计和RACE扩增 | 第111-112页 |
| ·扩增产物的电泳、回收、连接、转化和培养 | 第112-113页 |
| ·重组质粒DNA的提取、检测和测序 | 第113页 |
| ·紫小SuSy基因全长cDNA序列的拼接和验证 | 第113-114页 |
| ·紫小.SuSy基因在大肠杆菌中的高效表达 | 第114页 |
| ·SuSy基因原核表达载体的构建 | 第114页 |
| ·在大肠杆菌BL21中诱导紫小SuSy基因的表达 | 第114页 |
| ·融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第114页 |
| ·紫小SuSy、.AGPase、SSS基因表达的RT-PCR分析 | 第114-115页 |
| ·紫小SuSy、AGPase、SSS基因表达的Northern杂交分析 | 第115-116页 |
| ·生物信息学分析 | 第116-117页 |
| ·结果与分析 | 第117-135页 |
| ·总RNA提取与dscDNA合成 | 第117页 |
| ·同源基因cDNA中间片段的获得和分析 | 第117-125页 |
| ·同源基因cDNA中间片段的获得 | 第117-118页 |
| ·同源基因cDNA中间片段核苷酸序列及其预测氨基酸序列的分析 | 第118-125页 |
| ·DaSuSy1基因3’端的cDNA序列的获得 | 第125-126页 |
| ·DaSuSy1基因5’端的cDNA序列的获得 | 第126-129页 |
| ·DaSuSy1基因全长cDNA序列的获得、验证和分析 | 第129页 |
| ·DaSusy1所推定氨基酸序列及其特征分析 | 第129页 |
| ·DaSuSy1同源性和分子进化的分析 | 第129-133页 |
| ·DaSusy1基因在大肠杆菌BL21中的高效表达 | 第133-135页 |
| ·DaSusy1基因在原核中表达载体的构建 | 第133页 |
| ·pET-DaSusy1所表达融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第133-135页 |
| ·DaSuSy1、DaAGPase1、DaSSS1基因的时空表达分析 | 第135页 |
| ·讨论 | 第135-138页 |
| 5 山药蔗糖-淀粉转化受SA影响的基因型比较 | 第138-160页 |
| ·材料与方法 | 第139-140页 |
| ·植物材料和取样 | 第139页 |
| ·种植和管理 | 第139页 |
| ·SA的处理 | 第139页 |
| ·取样和前处理 | 第139页 |
| ·糖类化合物的制备和分析 | 第139页 |
| ·粗酶液制备与相关酶活性分析 | 第139页 |
| ·数据统计分析与作图 | 第139-140页 |
| ·结果与分析 | 第140-158页 |
| ·SA对山药地下块茎干物质影响的基因型比较 | 第140-141页 |
| ·SA对山药主要可溶性糖影响的基因型比较 | 第141-149页 |
| ·叶片和茎基部蔗糖受SA影响的基因型比较 | 第141-144页 |
| ·山药地下块茎主要可溶性糖受SA影响的基因型比较 | 第144-149页 |
| ·SA对山药地下块茎淀粉和纤维素调控的基因型比较 | 第149-153页 |
| ·SA对蔗糖-淀粉转化相关酶活性调控的基因型比较 | 第153-158页 |
| ·讨论 | 第158-160页 |
| 6 山药PAL基因cDNA序列的克隆与分析 | 第160-180页 |
| ·材料与方法 | 第161-164页 |
| ·植物材料 | 第161页 |
| ·主要试剂 | 第161页 |
| ·总RNA的提取及检测 | 第161页 |
| ·双链cDNA的合成 | 第161页 |
| ·PAL基因中间片段cDNA序列的获得 | 第161-162页 |
| ·基因中间特异片段获得的引物设计和PCR扩增 | 第161-162页 |
| ·紫小PAL基因3’端序列的引物设计和RACE扩增 | 第162页 |
| ·紫小PAL基因5’端序列引物设计和TAIL-PCR扩增 | 第162页 |
| ·扩增产物的电泳、回收、连接、转化和培养 | 第162页 |
| ·重组质粒DNA的提取、检测和测序 | 第162-163页 |
| ·紫小PAL基因全长cDNA序列的拼接和验证 | 第163页 |
| ·紫小PAL基因在大肠杆菌中的高效表达 | 第163页 |
| ·PAL基因原核表达载体的构建 | 第163页 |
| ·在大肠杆菌BL21中诱导紫小PAL基因的表达 | 第163页 |
| ·融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第163页 |
| ·紫小PAL基因表达的RT-PCR分析 | 第163页 |
| ·紫小PAL基因表达的Northern杂交分析 | 第163页 |
| ·生物信息学分析 | 第163-164页 |
| ·结果与分析 | 第164-176页 |
| ·总RNA提取与dscDNA合成 | 第164页 |
| ·PAL同源基因中间片段cDNA序列的获得和分析 | 第164-166页 |
| ·PAL同源基因中间片段cDNA序列的获得 | 第164-166页 |
| ·PAL基因cDNA中间片段核苷酸序列及其预测氨基酸序列的分析 | 第166页 |
| ·DaPAL1基因3’端的cDNA序列的获得 | 第166-168页 |
| ·DaPAL1基因5’端的cDNA序列的获得 | 第168-169页 |
| ·DaPAL1基因全长cDNA序列的获得、验证和分析 | 第169页 |
| ·DaPAL1所推定氨基酸序列及其特征分析 | 第169-171页 |
| ·DaPAL1同源性和分子进化的分析 | 第171-175页 |
| ·DaPAL1基因在大肠杆菌BL21中的高效表达 | 第175-176页 |
| ·DaPAL1基因在原核中表达载体的构建 | 第175页 |
| ·pET-DaPAL1所表达融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第175-176页 |
| ·DaPAL1基因的时空表达分析 | 第176页 |
| ·讨论 | 第176-180页 |
| 7 山药花青素合成关键基因cDNA序列的克隆与分析 | 第180-200页 |
| ·材料与方法 | 第181-184页 |
| ·植物材料 | 第181页 |
| ·主要试剂 | 第181页 |
| ·总RNA的提取及检测 | 第181页 |
| ·双链cDNA的合成 | 第181页 |
| ·基因中间片段cDNA序列的获得 | 第181-182页 |
| ·基因中间特异片段获得的引物设计和PCR扩增 | 第181页 |
| ·紫小ANS基因3’和5’端序列的引物设计和RACE扩增 | 第181-182页 |
| ·扩增产物的电泳、回收、连接、转化和培养 | 第182页 |
| ·重组质粒DNA的提取、检测和测序 | 第182页 |
| ·紫小ANS基因全长cDNA序列的拼接和验证 | 第182页 |
| ·紫小ANS基因在大肠杆菌中的高效表达 | 第182-183页 |
| ·ANS基因原核表达载体的构建 | 第183页 |
| ·在大肠杆菌BL21中诱导紫小ANS基因的表达 | 第183页 |
| ·融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第183页 |
| ·紫小CHS和PAL基因表达的RT-PCR分析 | 第183页 |
| ·紫小CHS和PAL基因表达的Northern杂交分析 | 第183页 |
| ·生物信息学分析 | 第183-184页 |
| ·结果与分析 | 第184-197页 |
| ·总RNA提取与dscDNA合成 | 第184页 |
| ·同源基因中间片段cDNA序列的获得和分析 | 第184-187页 |
| ·同源基因中间片段cDNA序列的分离和转化 | 第184-185页 |
| ·基因cDNA中间片段核苷酸序列及其预测氨基酸序列的分析 | 第185-187页 |
| ·DaANS1基因3’端的cDNA序列的获得 | 第187-189页 |
| ·DaANS1基因5’端的cDNA序列的获得 | 第189-190页 |
| ·DaANS1基因全长cDNA序列的获得、验证和分析 | 第190页 |
| ·DaANS1所推定氨基酸序列及其特征分析 | 第190-192页 |
| ·DaANS1同源性和分子进化的分析 | 第192-196页 |
| ·DaANS1基因在大肠杆菌BL21中的高效表达 | 第196-197页 |
| ·DaANS1基因在原核中表达载体的构建 | 第196页 |
| ·pET-ANS1所表达融合蛋白的SDS-PAGE分析 | 第196-197页 |
| ·DaANS1基因的时空表达分析 | 第197页 |
| ·讨论 | 第197-200页 |
| 8 山药地下块茎酚类物质形成及其SA调控的基因型比较 | 第200-228页 |
| ·材料与方法 | 第201-205页 |
| ·植物材料和取样 | 第201页 |
| ·地下块茎酚类化合物形成的基因型比较 | 第201页 |
| ·SA对地下块茎酚类化合物形成影响的基因型比较 | 第201页 |
| ·酚类化合物提取液的制备 | 第201页 |
| ·酚类化合物的测定 | 第201-203页 |
| ·总酚 | 第201-202页 |
| ·总类黄酮 | 第202页 |
| ·总黄酮醇 | 第202页 |
| ·总酚酸 | 第202页 |
| ·总花青素 | 第202-203页 |
| ·总单宁 | 第203页 |
| ·PAL粗酶液的制备和酶活性分析 | 第203-204页 |
| ·ANS粗酶液的制备和酶活性分析 | 第204页 |
| ·总抗氧化能力的分析 | 第204页 |
| ·数据统计分析与作图 | 第204-205页 |
| ·结果与分析 | 第205-224页 |
| ·山药地下块茎酚类物质形成的六种基因型比较 | 第205-213页 |
| ·地下块茎花青素类型的鉴定 | 第205页 |
| ·地下块茎酚类化合物的基因型比较 | 第205-209页 |
| ·地下块茎总抗氧化能力的基因型比较 | 第209页 |
| ·地下块茎PAL活性的基因型比较 | 第209-211页 |
| ·地下块茎ANS活性的基因型比较 | 第211页 |
| ·地下块茎酚类与糖类物质的形成关系 | 第211-213页 |
| ·山药地下块茎酚类物质形成受SA调控的基因型比较 | 第213-224页 |
| ·地下块茎总酚受SA调控的基因型比较 | 第213-215页 |
| ·地下块茎总类黄酮、总花青素和总黄酮醇受SA调控的基因型比较 | 第215-217页 |
| ·地下块茎总酚酸受SA调控的基因型比较 | 第217-220页 |
| ·地下块茎总单宁受SA调控的基因型比较 | 第220页 |
| ·地下块茎PAL活性受SA调控的基因型比较 | 第220-222页 |
| ·地下块茎ANS活性受SA凋控的基因型比较 | 第222页 |
| ·SA对蔗糖与地下块茎酚类物质形成关系影响的基因型比较 | 第222-224页 |
| ·讨论 | 第224-228页 |
| 结论 | 第228-232页 |
| 参考文献 | 第232-258页 |
| 博士在读期间发表的文章 | 第258页 |
