| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| ABSTRACT | 第13-20页 |
| 前言 | 第21-25页 |
| 文献回顾 | 第25-33页 |
| 第一部分 单纯多孔TI6AL4V支架和钛酸钡压电陶瓷涂层多孔TI6AL4V支架的设计、制备与检测 | 第33-48页 |
| 1 引言 | 第33-34页 |
| 2 实验材料 | 第34-35页 |
| 2.1 实验试剂 | 第34页 |
| 2.2 实验设备 | 第34-35页 |
| 3 实验方法 | 第35-39页 |
| 3.1 电子束熔融技术（EBM）增材制造的基本原理 | 第35页 |
| 3.2 多孔Ti6Al4V支架的设计与制备 | 第35-36页 |
| 3.3 水热合成法制备钛酸钡的原理与优势 | 第36页 |
| 3.4 在多孔Ti6Al4V支架表面制备钛酸钡（BaTi O_3）压电陶瓷涂层 | 第36-37页 |
| 3.5 单纯多孔Ti6Al4V支架和钛酸钡压电陶瓷修饰后的多孔Ti6Al4V支架结构、表面特性和力学性能的检测 | 第37-39页 |
| 3.6 钛酸钡压电陶瓷涂层的极化 | 第39页 |
| 3.7 统计学方法 | 第39页 |
| 4 结果 | 第39-45页 |
| 4.1 两种支架材料的大体观察 | 第39-40页 |
| 4.2 两种支架材料的Micro-CT扫描结果 | 第40-41页 |
| 4.3 表面粗糙度检测结果 | 第41-42页 |
| 4.4 水接触角测试结果 | 第42-43页 |
| 4.5 两种支架材料表面的XPS检测结果 | 第43-44页 |
| 4.6 扫描电镜和和普通能谱分析结果 | 第44-45页 |
| 4.7 两种支架材料的弹性模量以及抗压强度测试结果 | 第45页 |
| 5 讨论 | 第45-48页 |
| 第二部分 钛酸钡压电陶瓷涂层修饰的多孔TI6AL4V支架在低强度脉冲超声波作用下的体外细胞学实验 | 第48-77页 |
| 1 实验材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验动物 | 第49页 |
| 1.2 实验耗材 | 第49页 |
| 1.3 实验试剂 | 第49-50页 |
| 1.4 实验设备 | 第50页 |
| 2 实验方法 | 第50-61页 |
| 2.1 新西兰大白兔骨髓间充质干细胞的提取与培养 | 第50-52页 |
| 2.2 兔骨髓间充质干细胞的鉴定 | 第52-54页 |
| 2.3 兔骨髓间充质干细胞在支架材料上的接种 | 第54-55页 |
| 2.4 低强度脉冲超声波（LIPUS）条件的加载以及实验分组 | 第55页 |
| 2.5 细胞增殖活性检测 | 第55页 |
| 2.6 细胞碱性磷酸酶相对活性检测 | 第55-56页 |
| 2.7 扫描电镜下细胞在支架上的形态观察 | 第56页 |
| 2.8 死活细胞荧光染色检测细胞凋亡 | 第56-57页 |
| 2.9 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第57页 |
| 2.10 荧光显微镜下细胞形态和黏附状态观察与分析 | 第57-58页 |
| 2.11 实时定量PCR检测成骨相关基因的表达 | 第58-61页 |
| 2.12 统计学分析方法 | 第61页 |
| 3 结果 | 第61-72页 |
| 3.1 四种条件对兔骨髓间充质干细胞的增殖活力的影响 | 第61-62页 |
| 3.2 四种条件对兔骨髓间充质干细胞碱性磷酸酶相对活力的影响 | 第62-63页 |
| 3.3 扫描电镜下不同条件细胞形态观察 | 第63-65页 |
| 3.4 死活细胞荧光染色结果 | 第65-66页 |
| 3.5 流式细胞仪检测不同条件下细胞凋亡率 | 第66-69页 |
| 3.6 激光共聚焦显微镜观察不同条件下细胞粘附状态和形态 | 第69-71页 |
| 3.7 实时定量PCR检测兔骨髓间充质干细胞成骨分化相关基因表达情况 | 第71-72页 |
| 4 讨论 | 第72-77页 |
| 第三部分 钛酸钡压电陶瓷涂层修饰的多孔TI6AL4V支架在低强度脉冲超声波作用下修复兔桡骨大段骨缺损效果评价 | 第77-102页 |
| 1 实验材料 | 第77-79页 |
| 1.1 实验动物 | 第77-78页 |
| 1.2 实验药品与试剂 | 第78页 |
| 1.3 实验用手术器械与耗材 | 第78页 |
| 1.4 实验仪器与软件 | 第78-79页 |
| 2 实验方法 | 第79-88页 |
| 2.1 手术过程 | 第79-81页 |
| 2.2 低强度脉冲超声波的加载 | 第81页 |
| 2.3 兔桡骨移植材料的获取和固定 | 第81-82页 |
| 2.4 X线摄影检测 | 第82-83页 |
| 2.5 Micro-CT断层扫描 | 第83页 |
| 2.6 新生骨组织的荧光标记 | 第83-84页 |
| 2.7 标本硬组织切片制备 | 第84-85页 |
| 2.8 骨矿化沉积率（mineralization apposition rate， MAR）的计算 | 第85页 |
| 2.9 切片组织学染色 | 第85-86页 |
| 2.10 生物力学测试 | 第86-87页 |
| 2.11 统计学分析方法 | 第87-88页 |
| 3 结果 | 第88-99页 |
| 3.1 手术后动物一般情况 | 第88页 |
| 3.2 X线检查结果 | 第88-90页 |
| 3.3 Micro-CT扫描结果 | 第90-93页 |
| 3.4 新生骨组织荧光标记后的骨矿化沉积率计算 | 第93-95页 |
| 3.5 组织学切片分析结果 | 第95-98页 |
| 3.6 最大拔出力分析结果 | 第98-99页 |
| 4 讨论 | 第99-102页 |
| 小结 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-116页 |
| 个人简历和研究成果 | 第116-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
