中文摘要 | 第1-13页 |
ABSTRACT | 第13-16页 |
符号说明 | 第16-17页 |
第一章 前言 | 第17-29页 |
1. 血栓形成机制 | 第18-23页 |
·动静脉血栓的形成机制 | 第18-19页 |
·血管内皮上细胞上的几种细胞因子及其在血栓形成中的作用 | 第19-23页 |
2. 肝素的抗血栓作用 | 第23-25页 |
·肝素的活性结构 | 第23-24页 |
·肝素的抗凝血机制 | 第24-25页 |
3. 肝素的降解方法 | 第25-27页 |
·亚硝酸控制解聚法 | 第25-26页 |
·β-消除降解法 | 第26页 |
·其它制备LMWH的方法 | 第26页 |
·几种降解方法的比较 | 第26-27页 |
4. 本课题已有的研究基础 | 第27页 |
5. 本课题拟解决的问题 | 第27-29页 |
第二章 不同方法降解的肝素寡糖的制备与分离纯化 | 第29-36页 |
1. 仪器与试剂 | 第29页 |
·试剂 | 第29页 |
·仪器 | 第29页 |
2. 实验方法 | 第29-31页 |
·β-消除降解法制备肝素寡糖 | 第29-30页 |
·改良的亚硝酸降解法制备肝素寡糖 | 第30页 |
·Superdex 30 凝胶柱层析 | 第30页 |
·透析袋脱盐 | 第30-31页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) | 第31页 |
3. 结果 | 第31-35页 |
·肝素寡糖分离纯化的结果 | 第31-33页 |
·肝素寡糖PAGE电泳的结果 | 第33-35页 |
4 讨论 | 第35-36页 |
第三章 肝素寡糖的结构解析 | 第36-70页 |
1 材料 | 第36页 |
·试剂 | 第36页 |
·仪器 | 第36页 |
2 方法 | 第36-37页 |
·肝素寡糖片段分子量测定 | 第36页 |
·紫外扫描测定 | 第36-37页 |
·红外光谱测定 | 第37页 |
·核磁共振图谱测定 | 第37页 |
3 结果 | 第37-47页 |
·肝素寡糖片段分子量测定结果 | 第37-41页 |
·紫外扫描光谱结果 | 第41-42页 |
·红外光谱测定结果 | 第42-43页 |
·NMR图谱解析 | 第43-47页 |
4. 讨论 | 第47-48页 |
附图 | 第48-70页 |
第四章 两种方法降解的肝素寡糖对HUVEC分泌TFPI、TF、TM的影响 | 第70-84页 |
1 材料 | 第70页 |
·试剂 | 第70页 |
·仪器 | 第70页 |
2 方法 | 第70-73页 |
·肝素寡糖抗Xa活性测定 | 第70-71页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞分泌TFPI的影响 | 第71-72页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞内TM的影响 | 第72-73页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞内TF的影响 | 第73页 |
3. 结果 | 第73-81页 |
·两种方法降解的肝素寡糖的抗FⅩa | 第73-74页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞分泌TFPI的影响 | 第74-77页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞内TM含量的影响 | 第77-78页 |
·肝素寡糖各组分对HUVEC细胞内TF的影响 | 第78-81页 |
4. 讨论 | 第81-84页 |
第五章 RT-PCR测定两种方法降解的肝素寡糖对 HUVEC TM、TFPI基因表达的影响 | 第84-90页 |
1 材料 | 第84页 |
·试剂 | 第84页 |
·仪器 | 第84页 |
2 方法 | 第84-86页 |
·HUVEC细胞全mRNA的提取 | 第84-85页 |
·逆转录(RT)反应 | 第85-86页 |
3 结果 | 第86-88页 |
4. 讨论 | 第88-90页 |
总结 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第97-98页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第98页 |