| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 一、前言 | 第11-12页 |
| 1. 研究背景 | 第11页 |
| 2. 课题来源 | 第11-12页 |
| 二、文献综述 | 第12-27页 |
| 1. 细胞自噬概述 | 第12-13页 |
| 2. 自噬的分类及诱导因素 | 第13-14页 |
| 2.1 大自噬 | 第13页 |
| 2.2 小自噬 | 第13页 |
| 2.3 分子伴侣介导的自噬 | 第13-14页 |
| 2.4 自噬诱导因子 | 第14页 |
| 3. 自噬的调节及分子机制 | 第14-15页 |
| 4. 自噬体形成 | 第15-16页 |
| 5. 自噬相关基因 | 第16-19页 |
| 5.1 Beclin 1与细胞自噬的关系 | 第16-17页 |
| 5.2 LC3与细胞自噬的关系 | 第17-19页 |
| 6. 自噬与运动训练的关系 | 第19-20页 |
| 7. 细胞自噬的功能以及在维持正常心肌功能的作用 | 第20-21页 |
| 8. 运动训练对细胞自噬的影响 | 第21-22页 |
| 9. 结束语 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-27页 |
| 三、实验部分 | 第27-44页 |
| 1 引言 | 第27-28页 |
| 2 透射电子显微镜检测大鼠心肌细胞自噬 | 第28-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2 实验试剂 | 第28页 |
| 2.3 实验主要仪器 | 第28页 |
| 2.4 实验操作流程 | 第28-29页 |
| 2.5 实验结果及分析 | 第29-30页 |
| 3 不同力竭运动对大鼠心肌细胞自噬相关基因mRNA转录水平的影响 | 第30-38页 |
| 3.1 实验材料与研究方法 | 第30-32页 |
| 3.1.1 实验动物饲养及分组 | 第30-31页 |
| 3.1.2 实验动物的处死及取材 | 第31页 |
| 3.1.3 实验所需试剂 | 第31页 |
| 3.1.4 实验所需仪器及耗材 | 第31-32页 |
| 3.2 RT-PCR检测自噬相关基因Beclin 1 mRNA的转录状况 | 第32-35页 |
| 3.2.1 大鼠心肌细胞RNA提取 | 第32页 |
| 3.2.2 凝胶电泳法测定RNA纯度 | 第32-33页 |
| 3.2.3 RNA逆转录 | 第33页 |
| 3.2.4 PCR反应 | 第33-34页 |
| 3.2.4.1 引物设计 | 第33-34页 |
| 3.2.4.2 PCR反应体系 | 第34页 |
| 3.2.5 实验结果及数据统计 | 第34-35页 |
| 3.3 RT-PCR检测自噬相关基因LC3 mRNA的转录水平 | 第35-37页 |
| 3.3.1 RNA提取 | 第35页 |
| 3.3.2 RNA纯度测定 | 第35页 |
| 3.3.3 RNA逆转录 | 第35页 |
| 3.3.4 PCR反应 | 第35-36页 |
| 3.3.4.1 引物设计 | 第35页 |
| 3.3.4.2 PCR反应体系 | 第35-36页 |
| 3.3.5 实验数据及结果统计 | 第36-37页 |
| 3.4 实验数据分析 | 第37-38页 |
| 3.4.1 不同力竭运动对大鼠心肌细胞自噬相关基因Beclin1 mRNA转录的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.2 不同力竭运动对大鼠心肌细胞自噬相关基因LC3 mRNA转录的影响 | 第38页 |
| 4 不同力竭运动对大鼠心肌细胞自噬蛋白表达的影响 | 第38-43页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.2 实验试剂 | 第38-39页 |
| 4.3 实验仪器 | 第39-40页 |
| 4.4 Western blot检测大鼠心肌中自噬相关蛋白Beclin1、LC3的表达水平 | 第40-41页 |
| 4.5 实验结果及分析 | 第41-43页 |
| 4.5.1 实验数据统计 | 第41-42页 |
| 4.5.2 结果分析 | 第42-43页 |
| 4.5.2.1 不同强度力竭训练对大鼠心肌细胞Beclin1蛋白表达的影响 | 第43页 |
| 4.5.2.2 不同强度力竭训练对大鼠心肌细胞LC3蛋白表达的影响 | 第43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 附录 | 第48-49页 |
| 读研期间发表的论文 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
