| 英汉缩略语名词对比表 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| 英文摘要 | 第14-18页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 第一部分 TBI大鼠脑组织的病理变化及内源性MANF的诱导表达 | 第21-52页 |
| 1 材料 | 第21-26页 |
| 1.1 实验动物与分组 | 第21页 |
| 1.2 实验主要仪器设备 | 第21-22页 |
| 1.3 主要实验试剂及耗材 | 第22-23页 |
| 1.4 重要试剂配制 | 第23-26页 |
| 2 方法 | 第26-37页 |
| 2.1 大鼠TBI模型的建立 | 第26-27页 |
| 2.2 大鼠神经行为功能评分 | 第27-28页 |
| 2.3 头颅MRI检查 | 第28页 |
| 2.4 脑组织标本取材 | 第28-29页 |
| 2.5 HE染色 | 第29-30页 |
| 2.6 免疫组化染色 | 第30-31页 |
| 2.7 免疫荧光染色 | 第31页 |
| 2.8 荧光双标染色 | 第31-32页 |
| 2.9 Western blot检测 | 第32-34页 |
| 2.10 RT-PCR检测 | 第34-37页 |
| 2.11 统计学分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-47页 |
| 3.1 大鼠TBI引起的神经行为功能改变 | 第37-38页 |
| 3.2 大鼠TBI后头颅MRI的表现 | 第38-39页 |
| 3.3 大鼠TBI引起的脑组织形态学改变 | 第39-40页 |
| 3.4 大鼠TBI引起的脑小胶质细胞激活 | 第40-41页 |
| 3.5 大鼠TBI诱导挫伤灶周围MANF的表达上调 | 第41-44页 |
| 3.6 大鼠TBI诱导的MANF蛋白表达在不同脑区的分布情况 | 第44-47页 |
| 4 讨论 | 第47-51页 |
| 4.1 颅脑创伤及其继发性脑损伤 | 第47-48页 |
| 4.2 TBI模型的选择、病理学表现及评估 | 第48-49页 |
| 4.3 内质网应激相关蛋白MANF及其在TBI后脑组织中的表达和分布 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 第二部分 MANF对TBI大鼠的脑保护作用及其初步机制研究 | 第52-87页 |
| 第一节 重组人MANF蛋白对TBI大鼠脑保护作用及其剂量依赖性 | 第52-69页 |
| 1 材料 | 第52-54页 |
| 1.1 实验动物与分组 | 第52页 |
| 1.2 实验菌株 | 第52-53页 |
| 1.3 实验主要仪器设备 | 第53页 |
| 1.4 实验主要试剂及耗材 | 第53-54页 |
| 1.5 重要试剂配制 | 第54页 |
| 2 方法 | 第54-57页 |
| 2.1 重组人MANF蛋白的诱导表达、纯化与浓度测定 | 第54-55页 |
| 2.2 大鼠TBI模型的建立与侧脑室给药方法 | 第55-56页 |
| 2.3 大鼠神经行为功能评分 | 第56页 |
| 2.4 大鼠头颅MRI检测 | 第56页 |
| 2.5 脑组织标本取材及神经元的免疫荧光染色 | 第56-57页 |
| 2.6 脑组织含水量检测 | 第57页 |
| 2.7 统计学分析 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-63页 |
| 3.1 MANF蛋白对TBI大鼠死亡率的影响 | 第57-58页 |
| 3.2 MANF蛋白对TBI大鼠神经行为功能评分的影响 | 第58-59页 |
| 3.3 MANF蛋白对TBI大鼠神经元存活的影响 | 第59-61页 |
| 3.4 MANF蛋白对TBI大鼠脑水肿体积的影响 | 第61-62页 |
| 3.5 MANF蛋白对TBI大鼠脑含水量的影响 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-67页 |
| 4.1 MANF蛋白的分子结构与功能特点 | 第63-64页 |
| 4.2 MANF蛋白的神经保护作用 | 第64-65页 |
| 4.3 MANF蛋白在TBI中的脑保护作用 | 第65-67页 |
| 5 结论 | 第67-69页 |
| 第二节 重组人MANF抑制TBI大鼠继发性神经炎症反应及降低血脑屏障通透性 | 第69-87页 |
| 1 材料 | 第69-72页 |
| 1.1 实验动物与分组 | 第69-70页 |
| 1.2 实验菌株 | 第70页 |
| 1.3 实验主要仪器设备 | 第70-71页 |
| 1.4 实验主要试剂及耗材 | 第71-72页 |
| 1.5 重要试剂配制 | 第72页 |
| 2 方法 | 第72-75页 |
| 2.1 重组人MANF蛋白诱导表达,纯化和浓度测定(与第一节中方法相同) | 第72页 |
| 2.2 大鼠TBI模型建立和侧脑室给药方法(与第一节方法相同) | 第72页 |
| 2.3 血脑屏障通透性检测 | 第72-73页 |
| 2.4 吸光度-浓度标准曲线绘制 | 第73-74页 |
| 2.5 脑组织标本的取材 | 第74页 |
| 2.6 免疫荧光染色 | 第74页 |
| 2.7 Western blot检测 | 第74页 |
| 2.8 RT-PCR检测 | 第74-75页 |
| 2.9 统计学分析 | 第75页 |
| 3 结果 | 第75-81页 |
| 3.1 MANF对TBI大鼠小胶质细胞激活的调节作用 | 第75-77页 |
| 3.2 MANF对TBI大鼠炎症因子及NF-κB通路的调控作用 | 第77-79页 |
| 3.3 MANF对TBI大鼠血脑屏障的保护作用 | 第79-81页 |
| 4 讨论 | 第81-86页 |
| 4.1 神经炎症反应及NF-κB信号通路在TBI后继发性脑损伤中的作用和机制 | 第81-84页 |
| 4.2 MANF与炎症反应性疾病的关系及其作用机制 | 第84-85页 |
| 4.3 MANF对TBI后血脑屏障的保护作用及机制探讨 | 第85-86页 |
| 5 结论 | 第86-87页 |
| 全文总结 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-101页 |
| 个人简历 | 第101-103页 |
| 致谢 | 第103-105页 |
| 综述 | 第105-128页 |
| 参考文献 | 第118-128页 |
