| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 本文符号说明 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-17页 |
| 1.1 前言 | 第9页 |
| 1.2 植物诱导抗病性的概念以及特征 | 第9-10页 |
| 1.3 植物诱导抗病性的机制 | 第10-11页 |
| 1.3.1 信号识别 | 第10页 |
| 1.3.2 信号转导 | 第10-11页 |
| 1.3.2.1 水杨酸信号途径 | 第10页 |
| 1.3.2.2 茉莉酸/乙烯信号途径 | 第10-11页 |
| 1.3.3 防御基因的调控 | 第11页 |
| 1.3.4 抗性次生代谢物的积累 | 第11页 |
| 1.4 诱导植物抗性的激发子 | 第11-12页 |
| 1.5 海藻酸钠寡糖激发子 | 第12-14页 |
| 1.5.1 海藻酸钠寡糖来源及结构 | 第12页 |
| 1.5.2 海藻酸钠寡糖在植物上的生物活性 | 第12-14页 |
| 1.5.2.1 促进植物生长 | 第12-13页 |
| 1.5.2.2 缓解非生物胁迫 | 第13页 |
| 1.5.2.3 诱导植物抗病 | 第13页 |
| 1.5.2.4 其它活性 | 第13-14页 |
| 1.6 Pseudomonassyringaepv.tomatoDC3000和烟草花叶病毒的概况 | 第14-15页 |
| 1.6.1 植物病原菌PstDC3000以及在植株体内的增殖 | 第14-15页 |
| 1.6.2 烟草花叶病毒TMV以及在植物体内的寄生过程 | 第15页 |
| 1.7 本研究的背景、内容、目的和意义 | 第15-17页 |
| 第二章 海藻酸钠寡糖诱导野生型拟南芥抗Pseudomonas syringae pv.tomato DC 3000的防效鉴定 | 第17-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 培养基 | 第17-18页 |
| 2.1.2 供试菌株 | 第18页 |
| 2.1.3 供试植株 | 第18页 |
| 2.1.4 实验试剂与仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.2.1 PstDC3000的培养 | 第19页 |
| 2.2.2 拟南芥的准备 | 第19-20页 |
| 2.2.3 PstDC3000的接种 | 第20页 |
| 2.2.4 病情指数统计 | 第20页 |
| 2.2.5 PstDC3000生长量的测定 | 第20-21页 |
| 2.2.6 RNA的提取 | 第21页 |
| 2.2.7 拟南芥叶片RNA的反转 | 第21-22页 |
| 2.2.8 实时荧光定量PCR分析 | 第22页 |
| 2.3 数据处理 | 第22页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第22-26页 |
| 2.4.1 AOS预处理对接种PstDC3000拟南芥的表型影响 | 第22-23页 |
| 2.4.2 AOS预处理拟南芥病情指数统计 | 第23-24页 |
| 2.4.3 AOS预处理对拟南芥叶片中PstDC3000生长量的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.4 AOS预处理对PstDC3000标记基因的影响 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 海藻酸钠寡糖诱导拟南芥对Pseudomonas syringae pv.tomato DC 3000抗性的机制研究 | 第27-39页 |
| 3.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第27页 |
| 3.1.2 供试植物 | 第27页 |
| 3.1.3 实验试剂与仪器 | 第27-28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-30页 |
| 3.2.1 PstDC3000的培养 | 第28页 |
| 3.2.2 拟南芥的准备 | 第28页 |
| 3.2.3 AOS对PstDC3000抑制活性的测定 | 第28-29页 |
| 3.2.4 RNA的提取 | 第29页 |
| 3.2.5 拟南芥叶片RNA的反转 | 第29页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第29页 |
| 3.2.7 拟南芥叶片水杨酸和茉莉酸的提取 | 第29-30页 |
| 3.3 数据处理 | 第30页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 3.4.1 AOS对PstDC3000生长的影响 | 第30页 |
| 3.4.2 AOS预处理后抗性标记基因转录水平变化 | 第30-31页 |
| 3.4.3 AOS预处理后激素水平的变化 | 第31-33页 |
| 3.4.4 AOS诱导拟南芥突变株对PstDC3000的防卫反应 | 第33-38页 |
| 3.4.4.1 AOS预处理对接种PstDC3000拟南芥的表型影响 | 第34页 |
| 3.4.4.2 AOS预处理后拟南芥病情指数统计 | 第34-35页 |
| 3.4.4.3 AOS预处理对PstDC3000标记基因的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.4.4 AOS预处理后PR1的表达 | 第36-37页 |
| 3.4.4.5 AOS预处理后水杨酸的变化 | 第37-38页 |
| 3.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 海藻酸钠寡糖诱导烟草抗烟草花叶病毒的作用与机制研究 | 第39-47页 |
| 4.1 实验材料 | 第39-41页 |
| 4.1.1 供试植株 | 第39页 |
| 4.1.2 供试毒源 | 第39页 |
| 4.1.3 供试药剂 | 第39页 |
| 4.1.4 实验试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 4.1.5 蛋白电泳相关试剂 | 第40-41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 烟草花叶病毒的提纯 | 第41页 |
| 4.2.2 AOS预处理枯斑烟草及TMV接种方法 | 第41-42页 |
| 4.2.3 AOS预处理黄榆烟草及TMV接种方法 | 第42页 |
| 4.2.4 RNA的提取 | 第42页 |
| 4.2.5 烟草局部叶和系统叶片RNA的反转录 | 第42页 |
| 4.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第42页 |
| 4.2.7 BSA法测定蛋白浓度 | 第42页 |
| 4.2.8 Westernblot蛋白检测 | 第42-43页 |
| 4.3 数据处理 | 第43页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第43-46页 |
| 4.4.1 AOS对烟草花叶病毒的防效鉴定 | 第43-44页 |
| 4.4.2 AOS诱导烟草抗烟草花叶病毒(TMV)的机制研究 | 第44-46页 |
| 4.4.2.1 烟草局部叶和系统叶中TMV-CP的相对表达 | 第44-45页 |
| 4.4.2.1 烟草局部叶和系统叶中TMV-CP的蛋白相对含量 | 第45-46页 |
| 4.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
