| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-13页 |
| 1.1 酒精性肝病概况 | 第9-10页 |
| 1.1.1 酒精性肝病流行病学现状 | 第9页 |
| 1.1.2 酒精性肝损伤机制 | 第9页 |
| 1.1.3 酒精性肝病的治疗 | 第9-10页 |
| 1.2 丹皮酚的研究概况 | 第10-12页 |
| 1.2.1 简介 | 第10页 |
| 1.2.2 丹皮中有效成分 | 第10页 |
| 1.2.3 丹皮的主要药理活性 | 第10-11页 |
| 1.2.4 丹皮酚的药理活性分析 | 第11-12页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第12-13页 |
| 2 丹皮酚对酒精诱导HepG2细胞损伤的影响 | 第13-25页 |
| 2.1 引言 | 第13页 |
| 2.2 实验仪器和材料 | 第13-15页 |
| 2.3 实验方法与步骤 | 第15-18页 |
| 2.3.1 细胞的复苏 | 第15页 |
| 2.3.2 细胞的培养与传代 | 第15-16页 |
| 2.3.3 MTT法检测细胞生存率 | 第16页 |
| 2.3.4 MTT法检测丹皮酚对HepG2细胞生存率的影响 | 第16页 |
| 2.3.5 MTT法检测不同浓度酒精对HepG2细胞的影响 | 第16页 |
| 2.3.6 DPPH法筛选丹皮酚的最佳抗氧化浓度 | 第16-17页 |
| 2.3.7 细胞形态学观察丹皮酚对细胞的保护作用 | 第17页 |
| 2.3.8 检测细胞内ROS水平 | 第17页 |
| 2.3.9 检测细胞内炎症因子TNF-α、IL-6和IL-1β水平 | 第17-18页 |
| 2.3.10 检测细胞内NO水平 | 第18页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第18-23页 |
| 2.4.1 MTT法检测丹皮酚对HepG2细胞生存率的影响 | 第18页 |
| 2.4.2 MTT法检测酒精对HepG2细胞生存率的影响 | 第18-19页 |
| 2.4.3 丹皮酚总抗氧化能力检测 | 第19页 |
| 2.4.4 细胞形态学观察丹皮酚对HepG2细胞的保护作用 | 第19-20页 |
| 2.4.5 丹皮酚对HepG2细胞内酒精诱导的ROS的影响 | 第20-21页 |
| 2.4.6 丹皮酚对酒精诱导HepG2细胞内炎症因子TNF-α、IL-6和IL-1β影响 | 第21-22页 |
| 2.4.7 丹皮酚对酒精诱导HepG2细胞NO水平的的影响 | 第22-23页 |
| 2.5 本章小结 | 第23-25页 |
| 3 丹皮酚拮抗酒精诱导HepG2细胞损伤的分子机制 | 第25-35页 |
| 3.1 引言 | 第25页 |
| 3.2 实验仪器与材料 | 第25-28页 |
| 3.3 实验方法与步骤 | 第28-30页 |
| 3.3.1 Western blotting检测细胞内氧化应激与炎症反应相关蛋白 | 第28-30页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第30-33页 |
| 3.4.1 丹皮酚对SIRT1/Nrf2信号通路的影响 | 第30-31页 |
| 3.4.2 丹皮酚对SIRT1/NF-κB信号通路的影响 | 第31-32页 |
| 3.4.3 丹皮酚对GSH/GSSG比率的影响 | 第32-33页 |
| 3.4.4 丹皮酚对MDA水平的影响 | 第33页 |
| 3.5 本章小结 | 第33-35页 |
| 4 丹皮酚对C57BL/6小鼠急性酒精肝损伤保护作用研究 | 第35-43页 |
| 4.1 引言 | 第35页 |
| 4.2 实验仪器与材料 | 第35-37页 |
| 4.3 实验方法与步骤 | 第37-39页 |
| 4.3.1 小鼠急性酒精性肝损伤模型的建立 | 第37页 |
| 4.3.2 小鼠样本收集 | 第37页 |
| 4.3.3 小鼠血清中ALT、AST、GSH和TNF-α水平检测 | 第37-38页 |
| 4.3.4 小鼠肝脏组织病理学分析 | 第38页 |
| 4.3.5 小鼠肝脏匀浆中氧化还原与炎症反应相关蛋白检测 | 第38-39页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第39-42页 |
| 4.4.1 丹皮酚对小鼠血清中ALT、AST、GSH和TNF-α水平的影响 | 第39-40页 |
| 4.4.2 小鼠肝脏组织病理学观察 | 第40-41页 |
| 4.4.3 丹皮酚对小鼠肝脏匀浆中SIRT1、Nrf2和NF-κB蛋白的影响 | 第41-42页 |
| 4.5 本章小结 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
