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川丁特罗代谢与排泄研究

摘要第13-16页
Abstract第16-18页
第一章: 前言第19-29页
    1.1 药物代谢及其在新药研发中的意义第19-20页
    1.2 药物代谢研究的方法第20-22页
        1.2.1 体内研究方法第20-21页
        1.2.2 体外研究方法第21-22页
    1.3 药物代谢物对照品的制备方法第22-25页
        1.3.1 生物样品提取分离纯化法第23页
        1.3.2 微生物转化法第23-24页
        1.3.3 化学合成法第24页
        1.3.4 肝微粒体体外温孵法第24-25页
    1.4 哮喘的药物治疗及β_2-受体激动剂研究概况第25-27页
        1.4.1 哮喘及其治疗药物第25-26页
        1.4.2 β_2-肾上腺素受体激动剂在治疗哮喘中的应用第26-27页
            1.4.2.1 β_2-肾上腺素受体激动剂的作用机制第26页
            1.4.2.2 β_2-肾上腺素受体激动剂的分类第26-27页
    1.5 川丁特罗研究概况及立题依据第27-29页
第二章: 川丁特罗代谢物对照品的制备及其结构鉴定第29-50页
    2.1 药品、试剂与仪器第29-30页
    2.2 检测条件第30-31页
    2.3 大鼠尿液样品中代谢物的分离纯化第31-32页
        2.3.1 大鼠尿液样品的采集第31页
        2.3.2 大鼠尿液中代谢物的分离纯化流程第31-32页
    2.4 化学合成法制备川丁特罗衍生物第32-34页
        2.4.1 合成路线设计第33页
        2.4.2 川丁特罗硝基衍生物的合成—步骤一第33页
        2.4.3 川丁特罗硝基衍生物的还原—步骤二第33-34页
    2.5 川丁特罗微生物转化液中代谢物的分离纯化第34-39页
        2.5.1 菌株第34页
        2.5.2 培养基的配制第34页
        2.5.3 菌株筛选实验第34-35页
            2.5.3.1 生长细胞转化法第35页
            2.5.3.2 静息细胞转化法第35页
        2.5.4 样品预处理方法第35页
        2.5.5 菌株筛选结果第35-36页
        2.5.6 转化条件优化第36-38页
            2.5.6.1 最佳培养基的确定第36页
            2.5.6.2 培养基初始pH值第36-37页
            2.5.6.3 转化时间第37页
            2.5.6.4 底物浓度第37-38页
        2.5.7 制备规模转化第38页
        2.5.8 川丁特罗微生物转化液中代谢物的分离纯化流程第38-39页
    2.6 川丁特罗及其代谢物的结构鉴定第39-45页
    2.7 讨论第45-50页
        2.7.1 川丁特罗羟胺代谢物的稳定性第45页
        2.7.2 川丁特罗羟胺代谢物对照品的制备第45-47页
        2.7.3 静息细胞在微生物模型中的应用及影响微生物模型转化结果的几个因素第47页
        2.7.4 川丁特罗及其代谢物的核磁共振光谱解析第47-50页
第三章 川丁特罗大鼠体内及微生物模型中的代谢研究第50-73页
    3.1 药品、试剂与仪器第50页
    3.2 色谱条件及质谱条件第50-51页
    3.3 川丁特罗在大鼠体内的代谢研究第51-64页
        3.3.1 实验动物第51页
        3.3.2 给药方案与样品采集第51页
        3.3.3 生物样品预处理第51-52页
        3.3.4 川丁特罗在大鼠体内代谢物的结构鉴定第52-64页
            3.3.4.1 大鼠尿样中代谢物分析第52-56页
            3.3.4.2 大鼠胆汁中代谢物分析第56-61页
            3.3.4.3 大鼠粪便中代谢物分析第61-62页
            3.3.4.4 大鼠血浆中代谢物分析第62-63页
            3.3.4.5 川丁特罗在大鼠体内的代谢途径第63-64页
    3.4 川丁特罗在微生物模型中的代谢物鉴定第64-68页
        3.4.1 微生物模型转化条件第64-65页
        3.4.2 微生物模型中的代谢产物的结构鉴定第65-67页
        3.4.3 川丁特罗在短刺小克银汉霉AS 3.970中的代谢途径第67-68页
    3.5 讨论第68-73页
        3.5.1 川丁特罗及其代谢物的质谱断裂规律第68-69页
        3.5.2 谷胱甘肽结合代谢第69-70页
        3.5.3 川丁特罗在短刺小克银汉霉AS 3.970和大鼠体内的代谢物比较第70-73页
第四章 川丁特罗及其四种主要代谢物在大鼠尿液及粪便中的排泄第73-96页
    4.1 药品、试剂与仪器第73-74页
    4.2 溶液配制第74页
    4.3 色谱、质谱条件第74-75页
    4.4 生物样品预处理第75-76页
    4.5 分析方法验证第76-86页
        4.5.1 方法的选择性第76-78页
        4.5.2 标准曲线和线性范围第78-80页
        4.5.3 定量下限第80页
        4.5.4 方法的精密度和准确度第80-82页
        4.5.5 提取回收率第82页
        4.5.6 基质效应第82-84页
        4.5.7 稳定性第84-86页
    4.6 川丁特罗在大鼠体内的排泄第86-93页
        4.6.1 实验动物第86页
        4.6.2 给药方案与样品采集第86-87页
        4.6.3 实际样品的测定和数据处理第87页
        4.6.4 川丁特罗在大鼠体内排泄的实验结果第87-93页
            4.6.4.1 尿样中的排泄情况第87-91页
            4.6.4.2 粪样中的排泄情况第91-93页
    4.7 讨论第93-96页
        4.7.1 质谱、色谱条件的优化第93-94页
        4.7.2 样品收集、处理和储存过程中羟胺代谢物M2的稳定性第94页
        4.7.3 样品预处理方法的优化第94-95页
        4.7.4 酶水解条件考察第95-96页
第五章 川丁特罗体外代谢物鉴定及代谢物M2和M3的CYP450酶表型确认研究第96-121页
    5.1 药品、试剂和仪器第96-97页
    5.2 溶液配制第97-98页
    5.3 川丁特罗在大鼠肝微粒体(RLM)及人肝微粒体(HLM)中的代谢研究第98-101页
        5.3.1 大鼠肝微粒体制备和体外样品孵育第98-99页
        5.3.2 川丁特罗在HLM和RLM孵育液中的代谢物结构鉴定第99-100页
        5.3.3 川丁特罗在HLM和RLM中的体外代谢途径第100-101页
    5.4 催化代谢物M2和M3产生的CYP450同工酶研究第101-118页
        5.4.1 实验条件第101页
        5.4.2 化学抑制剂法研究催化代谢物M2及M3的CYP450同工酶第101-103页
            5.4.2.1 孵育条件的考察第101-102页
            5.4.2.2 抑制剂法的样品孵育与后处理第102-103页
        5.4.3 川丁特罗代谢物M2和M3在HLM中的酶促动力学参数测定第103页
        5.4.4 人重组酶法研究催化川丁特罗生成代谢物M2及M3的CYP450同工酶第103-104页
            5.4.4.1 川丁特罗在人重组酶中的代谢实验第103页
            5.4.4.2 人重组酶中M2和M3生成速率测定的孵育条件考察第103-104页
            5.4.4.3 人重组酶中代谢物M2和M3的酶促动力学参数测定第104页
        5.4.5 方法学验证第104-110页
            5.4.5.1 测定HLM中代谢物M2和M3的UPLC-MS/MS法分析方法验证第104-107页
            5.4.5.2 测定人重组酶中代谢物M2和M3的UPLC-MS/MS法分析方法验证第107-110页
        5.4.6 实验结果第110-118页
            5.4.6.1 人肝微粒体中代谢物M2和M3生成的孵育条件优化结果第110-111页
            5.4.6.2 各重组酶特异性化学抑制剂对代谢物M2和M3生成量的影响第111-112页
            5.4.6.3 代谢物M2及M3在HLM中酶促反应动力学参数第112-113页
            5.4.6.4 CYP2D6、CYP2C19及CYP3A4对川丁特罗的代谢第113页
            5.4.6.5 重组酶CYP2D6、CYP2C19及CYP3A4中M2和M3生成的孵育条件优化结果第113-115页
            5.4.6.6 代谢物M2在CYP2C19、CYP2D6及CYP3A4中生成的酶促反应动力学参数第115-117页
            5.6.6.7 代谢物M3在CYP2C19及CYP3A4中的酶促动力学参数第117-118页
    5.5 讨论第118-121页
第六章 结论第121-124页
参考文献第124-131页
附图第131-141页
致谢第141-142页
个人简历第142-143页
附件第143-159页
学位论文自愿预先检测申请表第159页

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