| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第11-20页 |
| 1.1 纳米材料模拟酶的简介 | 第11-12页 |
| 1.2 无机纳米材料模拟过氧化酶 | 第12-13页 |
| 1.3 无机纳米材料模拟氧化酶 | 第13-14页 |
| 1.4 无机纳米材料模拟葡萄糖氧化酶 | 第14-15页 |
| 1.5 无机纳米材料模拟超氧化物歧化酶 | 第15-16页 |
| 1.6 人工模拟酶的应用 | 第16-18页 |
| 1.6.1 在医药、生物学方面的应用 | 第16-18页 |
| 1.6.2 在环境保护方面的应用 | 第18页 |
| 1.7 本论文的研究背景和主要内容 | 第18-20页 |
| 第2章 纳米Cu_2O的细胞色素c氧化酶活性研究 | 第20-38页 |
| 2.1 实验部分 | 第20-23页 |
| 2.1.1 试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.2 仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 Cu_2O NPs的制备 | 第21-22页 |
| 2.1.4 还原态Cyt c的制备 | 第22页 |
| 2.1.5 Cu_2O NPs悬浮液的制备 | 第22页 |
| 2.1.6 在大气条件下催化氧化还原态Cyt c | 第22页 |
| 2.1.7 在N_2条件下催化氧化还原态Cyt c | 第22-23页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第23-37页 |
| 2.2.1 50nmCu_2O NPs的表征 | 第23-24页 |
| 2.2.2 150nm和500nmCu_2O NPs的表征 | 第24-25页 |
| 2.2.3 Cu_2O NPs的细胞色素c氧化酶活性 | 第25-26页 |
| 2.2.4 CD光谱 | 第26-28页 |
| 2.2.5 浸出液实验 | 第28-29页 |
| 2.2.6 Cu_2O NPs催化氧化还原态Cyt c之后的形貌和晶相 | 第29-30页 |
| 2.2.7 O_2对催化氧化还原态Cyt c的影响 | 第30-34页 |
| 2.2.7.1 EPR自旋捕获实验 | 第32-33页 |
| 2.2.7.2 荧光实验 | 第33-34页 |
| 2.2.8 研究Cu_2O NPs的粒径对细胞色素c氧化酶活性的影响 | 第34-36页 |
| 2.2.9 pH的影响 | 第36-37页 |
| 2.3 本章小结 | 第37-38页 |
| 第3章 纳米MnO_2的氧化酶及细胞色素c氧化酶活性研究 | 第38-57页 |
| 3.1 实验部分 | 第38-42页 |
| 3.1.1 试剂 | 第38-39页 |
| 3.1.2 仪器 | 第39页 |
| 3.1.3 多孔MnO_2微球(PS-MnO_2)的制备 | 第39页 |
| 3.1.4 MnO_2纳米棒(MnO_2-nanorods)的制备 | 第39-40页 |
| 3.1.5 多孔MnO_2微球的氧化酶活性 | 第40页 |
| 3.1.6 MnO_2纳米棒的细胞色素c氧化酶活性 | 第40-42页 |
| 3.1.6.1 还原态Cyt c的制备 | 第40页 |
| 3.1.6.2 MnO_2纳米棒悬浮液的制备 | 第40页 |
| 3.1.6.3 浸出液实验 | 第40-41页 |
| 3.1.6.4 在大气条件下催化氧化还原态Cyt c | 第41页 |
| 3.1.6.5 在N_2条件下催化氧化还原态Cyt c | 第41页 |
| 3.1.6.6 pH对催化氧化还原态Cyt c的影响 | 第41-42页 |
| 3.1.6.7 温度对催化氧化还原态Cyt c的影响 | 第42页 |
| 3.1.6.8 有机溶剂对催化氧化还原态Cyt c的影响 | 第42页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第42-56页 |
| 3.2.1 多孔MnO_2微球和MnO_2纳米棒的表征 | 第42-45页 |
| 3.2.2 多孔MnO_2微球的氧化酶活性 | 第45-47页 |
| 3.2.2.1 氧化TMB和OPDA | 第45-46页 |
| 3.2.2.2 比色法检测亚硫酸盐 | 第46-47页 |
| 3.2.3 多孔MnO_2微球和MnO_2纳米棒的细胞色素c氧化酶活性 | 第47-48页 |
| 3.2.4 浸出液实验 | 第48-49页 |
| 3.2.5 在N_2条件下催化氧化还原态Cyt c | 第49-50页 |
| 3.2.6 pH对MnO_2纳米棒细胞色素c氧化酶活性的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.7 MnO_2纳米棒的稳定性 | 第51-56页 |
| 3.2.7.1 MnO_2纳米棒对酸碱的稳定性 | 第51-53页 |
| 3.2.7.2 MnO_2纳米棒对温度的稳定性 | 第53-54页 |
| 3.2.7.3 MnO_2纳米棒在有机溶剂中的稳定性 | 第54-56页 |
| 3.3 本章小结 | 第56-57页 |
| 第4章 纳米Cu_2(OH)_3Cl的半胱氨酸酶活性研究 | 第57-68页 |
| 4.1 实验部分 | 第58-59页 |
| 4.1.1 试剂 | 第58页 |
| 4.1.2 仪器 | 第58页 |
| 4.1.3 Cu_2(OH)_3Cl的制备 | 第58-59页 |
| 4.1.4 Cu_2(OH)_3Cl的半胱氨酸酶活性 | 第59页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第59-67页 |
| 4.2.1 Cu_2(OH)_3Cl的表征 | 第59-61页 |
| 4.2.2 Cu_2(OH)_3Cl的半胱氨酸酶活性 | 第61-66页 |
| 4.2.2.1 pH对催化活性的影响 | 第63页 |
| 4.2.2.2 Cu_2(OH)_3Cl浓度对催化活性的影响 | 第63-64页 |
| 4.2.2.3 TA浓度对催化活性的影响 | 第64-65页 |
| 4.2.2.4 O_2对催化活性的影响 | 第65-66页 |
| 4.2.3 检测半胱氨酸 | 第66页 |
| 4.2.4 异物的干扰 | 第66-67页 |
| 4.3 本章小结 | 第67-68页 |
| 第5章 结论与展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-81页 |
| 致谢 | 第81-84页 |
| 在学期间的科研状况 | 第84页 |
