| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 黄酮类化合物 | 第13页 |
| 1.2 芦丁 | 第13-15页 |
| 1.2.1 芦丁的来源及理化性质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 芦丁的药理活性 | 第14-15页 |
| 1.3 异槲皮素 | 第15-18页 |
| 1.3.1 异槲皮素的理化性质 | 第15页 |
| 1.3.2 异槲皮素的药理活性 | 第15-17页 |
| 1.3.3 异槲皮素的来源与制备 | 第17-18页 |
| 1.4 α-L-鼠李糖苷酶的研究概况 | 第18-22页 |
| 1.4.1 α-L-鼠李糖苷酶的来源 | 第18页 |
| 1.4.2 α-L-鼠李糖苷酶的催化位点 | 第18-19页 |
| 1.4.3 α-L-鼠李糖苷酶活性测定 | 第19-20页 |
| 1.4.4 α-L-鼠李糖苷酶的应用 | 第20-21页 |
| 1.4.5 α-L-鼠李糖苷酶催化水解芦丁 | 第21-22页 |
| 1.5 黄酮类化合物的分离纯化 | 第22-23页 |
| 1.5.1 硅胶柱分离法 | 第22-23页 |
| 1.5.2 大孔树脂分离法 | 第23页 |
| 1.5.3 膜分离法 | 第23页 |
| 1.6 本论文的研究内容及意义 | 第23-25页 |
| 1.6.1 研究背景 | 第23-24页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第24页 |
| 1.6.3 研究意义 | 第24-25页 |
| 第2章 产α-L-鼠李糖苷酶菌株的筛选及鉴定 | 第25-35页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 主要实验仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.3.1 培养基的配制 | 第26-27页 |
| 2.3.2 芦丁和异槲皮素标准曲线的制作 | 第27页 |
| 2.3.3 产酶菌株的初筛 | 第27页 |
| 2.3.4 产酶菌株的复筛 | 第27页 |
| 2.3.5 酶活的测定 | 第27-28页 |
| 2.3.6 产酶菌株的鉴定 | 第28-29页 |
| 2.4 结果与分析 | 第29-34页 |
| 2.4.1 芦丁与异槲皮素的标准曲线 | 第29-31页 |
| 2.4.2 产酶菌株的筛选 | 第31页 |
| 2.4.3 产酶菌株的鉴定 | 第31-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第3章 黑曲霉NCU-317发酵产α-L-鼠李糖苷酶的条件优化 | 第35-49页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 主要实验仪器与试剂 | 第35-36页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第35-36页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1 种子液的制备 | 第36-37页 |
| 3.3.2 酶活的测定 | 第37页 |
| 3.3.3 碳源对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第37页 |
| 3.3.4 氮源对黑曲霉发酵NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第37页 |
| 3.3.5 无机盐对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.6 芦丁浓度对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第38页 |
| 3.3.7 初始pH值对NCU-317黑曲霉产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第38页 |
| 3.3.8 温度对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第38页 |
| 3.3.9 转速对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.10 装液量对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第39页 |
| 3.3.11 发酵周期对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖酶酶活的影响 | 第39页 |
| 3.3.12 优化结果鉴定 | 第39页 |
| 3.4 结果与分析 | 第39-47页 |
| 3.4.1 碳源对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第39-41页 |
| 3.4.2 氮源对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.3 无机盐对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第42-43页 |
| 3.4.4 芦丁浓度对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.5 初始pH值对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第44页 |
| 3.4.6 温度对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.7 转速对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.8 装液量对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第46页 |
| 3.4.9 发酵周期对黑曲霉NCU-317产α-L-鼠李糖苷酶酶活的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.10 黑曲霉NCU-317培养基优化 | 第47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第4章 α-L-鼠李糖苷酶分离纯化及酶学性质研究 | 第49-65页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 主要实验仪器与试剂 | 第49-50页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第49-50页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第50页 |
| 4.3 实验方法 | 第50-54页 |
| 4.3.1 粗酶液的制备 | 第50页 |
| 4.3.2 酶活的测定 | 第50-51页 |
| 4.3.3 蛋白浓度的标准曲线 | 第51页 |
| 4.3.4 硫酸铵的分级沉淀 | 第51页 |
| 4.3.5 盐析与透析 | 第51页 |
| 4.3.6 凝胶色谱层析 | 第51页 |
| 4.3.7 酶分子量的测定 | 第51-52页 |
| 4.3.8 酶学性质的研究 | 第52-53页 |
| 4.3.9 β-D-葡萄糖苷酶酶活的测定 | 第53页 |
| 4.3.10 转化时间的研究 | 第53-54页 |
| 4.3.11 酶动力学的研究 | 第54页 |
| 4.3.12 酶的固定化 | 第54页 |
| 4.4 结果与分析 | 第54-64页 |
| 4.4.1 蛋白浓度的标准曲线 | 第54-55页 |
| 4.4.2 粗酶液的分级沉淀 | 第55-56页 |
| 4.4.3 凝胶色谱层析 | 第56页 |
| 4.4.4 纯化结果 | 第56-57页 |
| 4.4.5 酶分子量的测定 | 第57-58页 |
| 4.4.6 酶的最佳反应温度及热稳定性的研究 | 第58-59页 |
| 4.4.7 酶的最佳反应pH及酸碱稳定性的研究 | 第59-60页 |
| 4.4.8 金属离子对酶活的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.9 β-D-葡萄糖苷酶酶活的测定 | 第61页 |
| 4.4.10 转化时间的研究 | 第61-62页 |
| 4.4.11 酶动力学的研究 | 第62-63页 |
| 4.4.12 酶的固定化 | 第63-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 第5章 异槲皮素的制备及分离纯化 | 第65-72页 |
| 5.1 引言 | 第65页 |
| 5.2 主要实验仪器与试剂 | 第65-66页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第65-66页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第66页 |
| 5.3 实验方法 | 第66-67页 |
| 5.3.1 粗酶液的制备 | 第66页 |
| 5.3.2 异槲皮素的制备 | 第66页 |
| 5.3.3 异槲皮素的分离纯化 | 第66-67页 |
| 5.3.4 异槲皮素的收集 | 第67页 |
| 5.3.5 异槲皮素的纯度检测 | 第67页 |
| 5.3.6 异槲皮素的结构鉴定 | 第67页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第67-71页 |
| 5.4.1 异槲皮素的制备 | 第67-68页 |
| 5.4.2 异槲皮素的分离纯化 | 第68-69页 |
| 5.4.3 异槲皮素的纯度检测 | 第69页 |
| 5.4.4 异槲皮素结构表征 | 第69-71页 |
| 5.5 本章小结 | 第71-72页 |
| 第6章 总结与展望 | 第72-74页 |
| 6.1 总结 | 第72-73页 |
| 6.2 创新点 | 第73页 |
| 6.3 展望 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第82页 |
