| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-22页 |
| 1.1 金丝桃苷的药理作用 | 第14-16页 |
| 1.1.1 金丝桃苷抗肝损伤作用 | 第14页 |
| 1.1.2 金丝桃苷抗抑郁作用 | 第14-15页 |
| 1.1.3 金丝桃苷抗炎症与抗血栓作用 | 第15页 |
| 1.1.4 金丝桃苷抗癌与抗菌作用 | 第15页 |
| 1.1.5 金丝桃苷抗氧化应激与抗细胞凋亡作用 | 第15-16页 |
| 1.2 金丝桃苷药理作用的主要机制 | 第16-17页 |
| 1.2.1 细胞外信号调解激酶 1/2 途径(Extracellular signal-regulated kinase 1/2signaling Path way , ERK 1/2 signaling pathway) | 第16页 |
| 1.2.2 细胞内钙信号途径(Intracellular Calcium signaling pathway) | 第16页 |
| 1.2.3 磷脂酰肌醇3激酶/ AKT途径(PI3K/Akt signaling pathway) | 第16-17页 |
| 1.2.4 核因子NF-E2相 关因子 2 抗氧化还原元件途径 (Nuclear factor erythroid2related factor 2-Antioxidant Response Element，Nrf2-ARE signalingpathway) | 第17页 |
| 1.3 Nrf2/ARE途径的药理作用 | 第17-19页 |
| 1.3.1 Nrf2/ARE途径在脑功能中的抗氧化作用 | 第17-18页 |
| 1.3.2 Nrf2/ARE途径在癌症中的作用 | 第18页 |
| 1.3.3 Nrf2/ARE途径在肝脏中的作用 | 第18页 |
| 1.3.4 Nrf2/ARE途径在其他疾病中的作用 | 第18-19页 |
| 1.4 高原环境低压低氧对记忆功能损伤和其药物防治 | 第19-20页 |
| 1.4.1 高原环境低压低氧对记忆功能损伤 | 第19页 |
| 1.4.2 高原环境低压低氧对记忆功能损伤的药物防治 | 第19-20页 |
| 1.5 高原低压低氧与Nrf2/ARE途径的联系与相关药物治疗 | 第20-22页 |
| 第二章 金丝桃苷对低氧时大鼠认知功能损伤的预防作用研究 | 第22-34页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.2.1 实验对象 | 第22页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第23页 |
| 2.3 实验主要试剂的配制 | 第23页 |
| 2.4 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.4.1 大鼠空间认知训练 | 第23页 |
| 2.4.2 给药与缺氧 | 第23-24页 |
| 2.4.3 记忆能力检测 | 第24页 |
| 2.4.4 大鼠海马组织的HE染色 | 第24-25页 |
| 2.4.5 统计学处理 | 第25页 |
| 2.5 实验结果 | 第25-32页 |
| 2.5.1 大鼠Morris水迷宫认知记忆模型的建立 | 第25-26页 |
| 2.5.2 低压低氧诱导大鼠认知损伤的模型建立 | 第26页 |
| 2.5.3 Hyp对低压低氧大鼠认知损伤的改善作用 | 第26-27页 |
| 2.5.4 Hyp对大鼠海马组织CA1区细胞形态的影响 | 第27-32页 |
| 2.6 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 金丝桃苷对低氧时大鼠海马的抗氧化作用及其机制研究 | 第34-51页 |
| 3.1 前言 | 第34页 |
| 3.2 实验材料 | 第34-36页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第35-36页 |
| 3.3 实验主要溶剂配制 | 第36页 |
| 3.3.1 SOD试剂盒溶剂配制 | 第36页 |
| 3.3.2 CAT试剂盒溶剂配制 | 第36页 |
| 3.3.3 MDA试剂盒溶剂配制 | 第36页 |
| 3.3.4 GSH试剂盒溶剂配制 | 第36页 |
| 3.4 实验方法 | 第36-44页 |
| 3.4.1 海马组织氧化应激损伤水平和抗氧化指标的检测 | 第36-37页 |
| 3.4.2 海马组织氧化应激损伤水平检测 | 第37-38页 |
| 3.4.3 海马抗氧化酶活性检测 | 第38-39页 |
| 3.4.4 qRT-PCR检测海马组织Nrf2和HO-1 的mRNA的表达水平 | 第39-41页 |
| 3.4.5 Western bolt检测海马组织Nrf2和HO-1 的蛋白水平 | 第41-44页 |
| 3.4.6 统计学处理 | 第44页 |
| 3.5 实验结果 | 第44-48页 |
| 3.5.1 Hyp对低压低氧引起海马组织氧化应激损伤的改善作用 | 第44-45页 |
| 3.5.2 Hyp对低压低氧引起海马组织抗氧化蛋白活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.5.3 海马组织的Nrf2和HO-1 的mRNA的表达量 | 第46-47页 |
| 3.5.4 海马组织的Nrf2和HO-1 的蛋白的表达量 | 第47-48页 |
| 3.6 讨论 | 第48-51页 |
| 第四章 金丝桃苷对低氧时高分化PC12细胞的抗氧化效应研究 | 第51-71页 |
| 4.1 前言 | 第51页 |
| 4.2 实验材料 | 第51-53页 |
| 4.2.1 实验对象 | 第51页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第52-53页 |
| 4.3 实验主要试剂的配制 | 第53页 |
| 4.3.1 10%DMEM细胞培养液 | 第53页 |
| 4.3.2 Hyp溶液的配制 | 第53页 |
| 4.4 实验方法 | 第53-62页 |
| 4.4.1 高分化PC12细胞复苏 | 第53-54页 |
| 4.4.2 高分化PC12细胞传代 | 第54页 |
| 4.4.3 高分化PC12细胞冻存 | 第54页 |
| 4.4.4 CCK-8 检测Hyp对低氧处理的高分化PC12细胞活力的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.5 ELISA测定Hyp对低氧处理的高分化PC12细胞氧化应激指标的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.6 Hyp对低氧处理的高分化PC12细胞的Nrf2和HO-1 的mRNA的表达水平 | 第56-59页 |
| 4.4.7 Western bolt检测Hyp对低氧处理的高分化PC12细胞的Nrf2的蛋白水平 | 第59-62页 |
| 4.4.8 统计学处理 | 第62页 |
| 4.5 实验结果 | 第62-70页 |
| 4.5.1 Hyp对低氧暴露下高分化PC12细胞活力的影响 | 第62-63页 |
| 4.5.2 Hyp对低氧暴露下PC12细胞的氧化应激的影响 | 第63-65页 |
| 4.5.3 Hyp对低氧暴露下PC12细胞Nrf2和HO-1 的mRNA表达的影响 | 第65-67页 |
| 4.5.4 Hyp对低氧暴露下PC12细胞Nrf2的蛋白表达的影响 | 第67-70页 |
| 4.6 讨论 | 第70-71页 |
| 第五章 全文总结 | 第71-72页 |
| 5.1 Hyp对低压低氧引起大鼠认知功能损伤的作用 | 第71页 |
| 5.2 Hyp对低压低氧引起大鼠认知功能损伤的保护作用的机制 | 第71页 |
| 5.3 Hyp对低氧时高分化PC12细胞的抗氧化效应研究 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 附录1英文缩写词一览表 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表文章 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
