| 摘要 | 第2-4页 |
| SUMMARY | 第4-6页 |
| 缩略词表 | 第7-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1 骨缺损 | 第11页 |
| 2 修复骨缺损的方法 | 第11-14页 |
| 2.1 骨移植 | 第11-12页 |
| 2.2 组织工程技术 | 第12页 |
| 2.3 膜引导组织再生技术 | 第12-13页 |
| 2.4 生长因子 | 第13页 |
| 2.5 基因疗法 | 第13-14页 |
| 3 骨缺损修复材料的研究进展 | 第14-16页 |
| 3.1 天然骨材料 | 第14页 |
| 3.2 无机材料 | 第14-15页 |
| 3.3 高分子材料 | 第15页 |
| 3.4 复合材料 | 第15-16页 |
| 4 淫羊藿苷的研究进展 | 第16-17页 |
| 4.1 淫羊藿苷 | 第16页 |
| 4.2 淫羊藿苷的药理作用 | 第16-17页 |
| 4.2.1 促进骨生长 | 第16-17页 |
| 4.2.2 对免疫功能方面的影响 | 第17页 |
| 4.2.3 对心、脑血管系统的影响 | 第17页 |
| 4.2.4 对内分泌系统的影响 | 第17页 |
| 5 本文研究的主要内容 | 第17-19页 |
| 第二章 复合支架材料的制备与表征 | 第19-31页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第19页 |
| 1.1 主要仪器 | 第19页 |
| 1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-23页 |
| 2.1 胶原蛋白的提取 | 第19-20页 |
| 2.2 壳聚糖载药微球的制备及其体外缓释 | 第20-21页 |
| 2.2.1 壳聚糖微球的制备 | 第20页 |
| 2.2.2 壳聚糖微球的微观结构观察 | 第20-21页 |
| 2.2.3 壳聚糖微球体外缓释曲线 | 第21页 |
| 2.3 复合支架材料的制备及其表征 | 第21-23页 |
| 2.3.1 复合材料壳层结构的制备 | 第21页 |
| 2.3.2 复合材料芯层结构的制备 | 第21-22页 |
| 2.3.3 复合材料的微观结构 | 第22页 |
| 2.3.4 复合材料的红外光谱表征 | 第22页 |
| 2.3.5 复合材料壳层结构表面接触角的测定 | 第22页 |
| 2.3.6 复合材料壳层结构透气性的测定 | 第22页 |
| 2.3.7 复合材料壳层结构吸水率的测定 | 第22-23页 |
| 2.3.8 复合材料壳层结构孔隙率的测定 | 第23页 |
| 2.3.9 复合材料壳层结构力学性能的测试 | 第23页 |
| 2.3.10 复合支架材料的降解实验 | 第23页 |
| 2.3.11 芯层内载药微球的体外缓释实验 | 第23页 |
| 3 统计学分析 | 第23-24页 |
| 4 结果 | 第24-29页 |
| 4.1 扫描电镜观察微观结构 | 第24-25页 |
| 4.2 复合材料的表征分析 | 第25-27页 |
| 4.2.1 复合材料壳层结构的红外光谱分析 | 第25-26页 |
| 4.2.2 复合材料壳层结构的物理特性 | 第26-27页 |
| 4.2.3 支架材料的降解性 | 第27页 |
| 4.3 壳聚糖载药微球药物的体外缓释效果 | 第27-29页 |
| 4.3.1 壳聚糖微球直接体外缓释 | 第27-29页 |
| 4.3.2 芯层内微球体外缓释 | 第29页 |
| 5 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 骨修复材料复合骨髓间充质干细胞的实验研究 | 第31-40页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第31页 |
| 1.1 主要仪器 | 第31页 |
| 1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.1 大鼠间充质干细胞的分离培养 | 第31-32页 |
| 2.2 大鼠间充质干细胞与支架材料的共培养 | 第32页 |
| 2.3 扫描电镜观察细胞与支架材料的复合情况 | 第32页 |
| 2.4 组织学观察细胞与支架材料的复合情况 | 第32-34页 |
| 2.4.1 H&E染色观察 | 第32-33页 |
| 2.4.2 荧光染色 | 第33-34页 |
| 3 结果 | 第34-38页 |
| 3.1 细胞与材料共培养 | 第34页 |
| 3.2 扫描结果 | 第34-36页 |
| 3.3 组织学结果 | 第36-38页 |
| 3.3.1 H&E染色观察 | 第36-37页 |
| 3.3.2 荧光染色观察 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 第四章 骨修复材料修复骨缺损的实验研究 | 第40-58页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第40页 |
| 1.1 主要仪器 | 第40页 |
| 1.2 主要试剂 | 第40页 |
| 2 实验方法 | 第40-44页 |
| 2.1 实验动物 | 第40页 |
| 2.2 复制实验动物骨缺损模型 | 第40-41页 |
| 2.3 大体观察 | 第41页 |
| 2.4 影像学观察 | 第41页 |
| 2.4.1 X射线成像 | 第41页 |
| 2.4.2 三维CT检测 | 第41页 |
| 2.5 组织学观察 | 第41-44页 |
| 2.5.1 H&E染色 | 第42页 |
| 2.5.2 Masson染色 | 第42-43页 |
| 2.5.3 免疫组织化学 | 第43-44页 |
| 3 结果 | 第44-56页 |
| 3.1 术后大体观察结果 | 第44-46页 |
| 3.2 影像学结果 | 第46-49页 |
| 3.2.1 X射线检查 | 第46页 |
| 3.2.2 三维CT检测 | 第46-49页 |
| 3.3 组织学分析结果 | 第49-51页 |
| 3.3.1 H&E染色 | 第49页 |
| 3.3.2 Masson染色 | 第49-51页 |
| 3.4 免疫组织化学染色观察 | 第51-56页 |
| 3.4.1 Alkaline Phosphatase免疫组化观察 | 第51-53页 |
| 3.4.2 Collagen I免疫组化观察 | 第53页 |
| 3.4.3 Osteocalcin免疫组化观察 | 第53-55页 |
| 3.4.4 Osteopontin免疫组化观察 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| 第五章 结论与展望 | 第58-59页 |
| 1 结论 | 第58页 |
| 2 不足与展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 作者简介 | 第67-68页 |
| 导师简介 | 第68-69页 |