| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 图目录 | 第10-12页 |
| 表目录 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 纳米金表面DNA构象的现有研究方法 | 第13-18页 |
| 1.1.1 琼脂糖凝胶电泳法 | 第14-15页 |
| 1.1.2 荧光分析法 | 第15-16页 |
| 1.1.3 比色检测法 | 第16-17页 |
| 1.1.4 数学模拟法 | 第17页 |
| 1.1.5 激光解离质谱分析法(LDI-MS) | 第17-18页 |
| 1.2 纳米金表面DNA构象研究方法的展望 | 第18-22页 |
| 1.2.1 动态光散射 | 第19-21页 |
| 1.2.2 Zeta电位 | 第21-22页 |
| 1.3 指数富集的配基系统进化技术(SELEX) | 第22-26页 |
| 1.3.1 SELEX技术简介 | 第22-23页 |
| 1.3.2 SELEX技术及其优化 | 第23-26页 |
| 1.3.3 SELEX技术的局限 | 第26页 |
| 1.5 本论文的立项依据和研究内容 | 第26-28页 |
| 参考文献 | 第28-31页 |
| 第二章 动态光散射与zeta电位测定在DNA/AuNP复合物表征中的适用性比较 | 第31-42页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验步骤 | 第31-34页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.2 13nm纳米金的制备、浓度测定与粒径测定 | 第32页 |
| 2.2.3 Zetasizer ZS90仪器的测量参数的设定 | 第32-33页 |
| 2.2.4 纳米金的DLS与zeta电位的测定 | 第33页 |
| 2.2.5 巯基修饰DNA的还原及其在纳米金表面的包被 | 第33页 |
| 2.2.6 DNA/AuNP复合物的zeta电位与DLS的测量 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-40页 |
| 2.3.1 13nm纳米金的表征 | 第34页 |
| 2.3.2 zeta电位与DLS重复多次测定的稳定性 | 第34-36页 |
| 2.3.3 纳米金浓度对zeta电位与DLS粒径测定的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.4 盐浓度对DN-AuNP进行zeta电位与DLS粒径测定的影响 | 第37-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-42页 |
| 第三章 利用动态光散射研完纳米金表面寡聚核苷酸的构象 | 第42-60页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验步骤 | 第43-46页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.2 DLS测定 | 第44页 |
| 3.2.3 利用DLS研究巯基修饰线性DNA和核酸适配体在纳米金表面的动态自组装过程 | 第44页 |
| 3.2.4 荧光定量纳米金表面DNA量 | 第44-45页 |
| 3.2.5 紫外定量纳米金表面DNA量 | 第45页 |
| 3.2.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第45页 |
| 3.2.7 通过DLS研究非巯基修饰线性DNA包被纳米金的动态过程 | 第45页 |
| 3.2.8 通过DLS研究盐浓度对DNA在纳米金表面构象变化的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.9 通过DLS研究MCH对DNA在纳米金表面构象变化的影响 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-58页 |
| 3.3.1 利用DLS动态检测DNA在纳米金表面组装过程 | 第46-47页 |
| 3.3.2 线性DNA在纳米金表面自组装过程的老化过程的动力学模型 | 第47-50页 |
| 3.3.3 线性DNA和适配体探针在纳米金表面的构象模型 | 第50-54页 |
| 3.3.4 纳米金表面DNA构象研究的指导意义 | 第54-56页 |
| 3.3.5 利用DLS检测MCH对DNA在纳米金表面构象的影响 | 第56-58页 |
| 3.4 小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 第四章 核酸适配体构象对其分子识别能力的影响—以可卡因和牛凝血酶蛋白的检测为例 | 第60-69页 |
| 4.1 引言 | 第60-61页 |
| 4.2 实验步骤 | 第61-63页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第61页 |
| 4.2.2 DNA/AuNP的合成 | 第61-62页 |
| 4.2.3 利用DLS研究可卡因与其核酸适配体的相互作用 | 第62页 |
| 4.2.4 牛凝血酶蛋白的定量 | 第62页 |
| 4.2.5 比色法研究凝血酶蛋白(Tb)与其核酸适配体的相互作用 | 第62-63页 |
| 4.2.6 利用DLS研究thrombin与其核酸适配体的动力学作用过程 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-67页 |
| 4.3.1 利用DLS研究可卡因与其核酸适配体的相互作用 | 第63-65页 |
| 4.3.2 凝血酶蛋白与其适配体的相互作用研究 | 第65-67页 |
| 4.4 小结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-69页 |
| 第五章 核酸适配体筛选技术及其条件优化 | 第69-89页 |
| 5.1 引言 | 第69页 |
| 5.2 实验结果与讨论 | 第69-86页 |
| 5.2.1 实验试剂与仪器 | 第69-70页 |
| 5.2.2 筛选步骤简介 | 第70-71页 |
| 5.2.3 缓冲体系的选择 | 第71-76页 |
| 5.2.4 连接方法的选择 | 第76-80页 |
| 5.2.5 单链生成法的优化 | 第80-82页 |
| 5.2.6 首轮SELEX实验 | 第82-86页 |
| 5.3 小结 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-89页 |
| 本论文创新点说明 | 第89-90页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第90-91页 |
| 学术论文 | 第90页 |
| 专利发明 | 第90页 |
| 在校荣誉 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
