缩写词 | 第8-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第15-23页 |
1.1 凯氏带的研究进展 | 第15-18页 |
1.1.1 凯氏带的结构及化学组成 | 第15-16页 |
1.1.2 凯氏带的生理功能 | 第16页 |
1.1.3 凯氏带形成的调控机制 | 第16-18页 |
1.2 番茄毛根转化的研究进展 | 第18-22页 |
1.2.1 发根农杆菌的应用 | 第18-19页 |
1.2.2 番茄根系的研究进展 | 第19-20页 |
1.2.3 番茄转化系统的研究进展 | 第20-22页 |
1.3 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
第二章 植物凯氏带形成调控相关基因进化关系分析 | 第23-29页 |
2.1 材料与方法 | 第23-24页 |
2.1.1 数据库 | 第23页 |
2.1.2 进化树构建 | 第23-24页 |
2.1.3 数据处理 | 第24页 |
2.2 结果与分析 | 第24-28页 |
2.2.1 进化树分析 | 第24页 |
2.2.2 番茄中凯氏带同源基因分析 | 第24-28页 |
2.3 讨论 | 第28-29页 |
第三章 番茄中凯氏带同源基因的表达模式 | 第29-39页 |
3.1 材料与方法 | 第29-34页 |
3.1.1 实验材料 | 第29页 |
3.1.2 试验试剂和配方 | 第29-30页 |
3.1.3 实验仪器 | 第30页 |
3.1.4 实验步骤 | 第30-34页 |
3.1.4.1 GUS染色 | 第31页 |
3.1.4.2 CTAB法提取番茄gDNA | 第31页 |
3.1.4.3 徒手切片 | 第31页 |
3.1.4.4 分子克隆步骤 | 第31-34页 |
3.2 结果与分析 | 第34-37页 |
3.2.1 目的载体的克隆与毛根转化 | 第34-35页 |
3.2.2 拟南芥与番茄根结构分析 | 第35-36页 |
3.2.3 番茄启动子的表达位置分析 | 第36页 |
3.2.4 拟南芥启动子的表达模式 | 第36-37页 |
3.3 讨论 | 第37-39页 |
第四章 番茄根系中凯氏带调控基因功能分析 | 第39-50页 |
4.1 材料与方法 | 第39-41页 |
4.1.1 实验材料 | 第39页 |
4.1.2 实验试剂和配方 | 第39页 |
4.1.3 实验仪器 | 第39页 |
4.1.4 实验步骤 | 第39-41页 |
4.1.4.1 染色方法 | 第39页 |
4.1.4.2 TRIzol法提取番茄总RNA | 第39-40页 |
4.1.4.3 RNA反转录成cDNA | 第40页 |
4.1.4.4 引物设计 | 第40-41页 |
4.1.4.5 构建载体 | 第41页 |
4.1.5 数据处理 | 第41页 |
4.2 结果与分析 | 第41-48页 |
4.2.1 正常主根与毛根的凯氏带观察 | 第41-42页 |
4.2.2 SlSHR基因的功能验证 | 第42-43页 |
4.2.3 SlSHR基因对番茄凯氏带的影响 | 第43-45页 |
4.2.4 SlMYB36-1基因对番茄凯氏带的影响 | 第45-47页 |
4.2.5 SlSGN3-2基因对番茄凯氏带的影响 | 第47-48页 |
4.2.6 SHR对拟南芥凯氏带的影响 | 第48页 |
4.3 讨论 | 第48-50页 |
4.3.1 上游基因SlSHR-1和SlMYB36-1对番茄凯氏带的影响 | 第48-49页 |
4.3.2 下游基因SlSGN3-2对番茄凯氏带的影响 | 第49-50页 |
第五章 启动子保守元件的分析 | 第50-55页 |
5.1 材料与方法 | 第50页 |
5.1.1 实验材料 | 第50页 |
5.1.2 实验方法 | 第50页 |
5.1.3 数据库 | 第50页 |
5.2 结果与分析 | 第50-53页 |
5.2.1 启动子表达保守性分析 | 第50-51页 |
5.2.2 启动子保守元件分析 | 第51-53页 |
5.3 讨论 | 第53-55页 |
第六章 全文结论 | 第55-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
附录A 电泳图 | 第62-63页 |
附录B 测序结果 | 第63-68页 |
附录C CTAB法提取番茄gDNA | 第68-69页 |
附录D PCR产物纯化 | 第69-70页 |
附录E 感受态制备方法 | 第70-71页 |
附录F 质粒转化 | 第71-72页 |
附录G 试剂盒提取大肠杆菌质粒 | 第72-73页 |
附录H TRlzol法提取番茄总RNA | 第73-74页 |
硕士期间的科研成果 | 第74-75页 |
致谢 | 第75页 |