| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-29页 |
| 1.1 海绵及海绵共附生微生物 | 第12-18页 |
| 1.1.1 海绵 | 第12-15页 |
| 1.1.2 海绵共附生微生物 | 第15-18页 |
| 1.2 rRNA 分子生物学研究手段 | 第18-23页 |
| 1.2.1 rDNA 基因文库 | 第18-22页 |
| 1.2.2 rRNA 在生态研究中的分析 | 第22-23页 |
| 1.3 海绵中的氮循环以及脲酶的研究进展 | 第23-28页 |
| 1.3.1 海洋中的氮循环 | 第23-24页 |
| 1.3.2 海绵氮循环微生物 | 第24-25页 |
| 1.3.3 脲酶的研究进展 | 第25-28页 |
| 1.4 研究目的、内容与创新点 | 第28-29页 |
| 1.4.1 研究的目的与意义 | 第28页 |
| 1.4.2 创新点 | 第28-29页 |
| 第二章 海绵中共附生真菌原位活跃程度的研究 | 第29-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第29-34页 |
| 2.1.1 材料 | 第29页 |
| 2.1.2 试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.4 方法 | 第30-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-46页 |
| 2.2.1 海绵基因组 | 第34页 |
| 2.2.2 海绵总 RNA | 第34-35页 |
| 2.2.3 PCR 结果分析 | 第35-37页 |
| 2.2.4 BLAST 比对结果以及系统进化分析 | 第37-46页 |
| 2.3 讨论 | 第46-47页 |
| 2.4 本章总结 | 第47-48页 |
| 第三章 海绵Xestospongia testudinaria中共附生微生物中脲酶基因在RNA水平上的系统发育研究 | 第48-57页 |
| 3.1 材料和方法 | 第48-50页 |
| 3.1.1 材料 | 第48页 |
| 3.1.2 方法 | 第48-50页 |
| 3.3 结果 | 第50-55页 |
| 3.3.1 海绵 Xestospongia testudinaria 总 RNA 提取 | 第50-51页 |
| 3.3.2 海绵 X. testudinaria 总 cDNA 中脲酶基因 ureC 的扩增 | 第51-52页 |
| 3.3.3 BLAST 比对结果以及系统进化分析 | 第52-55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-56页 |
| 3.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 第四章 海绵中分离得到的脲酶产生菌 Bacillus licheniformis B81 脲酶发酵优化初探 | 第57-72页 |
| 4.1 实验材料 | 第57页 |
| 4.2 实验方法 | 第57-62页 |
| 4.2.1 脲酶产生菌鉴定 | 第57-58页 |
| 4.2.2 基础培养基选择 | 第58-59页 |
| 4.2.3 菌体粗酶液的提取 | 第59-60页 |
| 4.2.4 氮的标准曲线绘制 | 第60页 |
| 4.2.5 粗酶液的脲酶活性测定 | 第60页 |
| 4.2.6 培养基优化实验 | 第60-62页 |
| 4.3 结果 | 第62-70页 |
| 4.3.1 脲酶产生菌鉴定 | 第62页 |
| 4.3.2 氮的标准曲线绘制 | 第62-63页 |
| 4.3.3 基础培养基筛选 | 第63-65页 |
| 4.3.4 生长曲线绘制 | 第65-66页 |
| 4.3.5 培养基重要因素筛选 | 第66-70页 |
| 4.4 讨论 | 第70页 |
| 4.5 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 总结与展望 | 第72-75页 |
| 5.1 总结 | 第72-73页 |
| 5.2 展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 附录 I 实验中使用的仪器 | 第79-80页 |
| 附录 II 实验所需配制的试剂 | 第80-81页 |
| 附录 III 实验中所得序列数据 | 第81-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 学术论文和科研成果目录 | 第99页 |
