摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
目录 | 第5-7页 |
第一章 前言 | 第7-9页 |
1.1 猪肌纤维的研究进展 | 第7页 |
1.2 本研究的意义 | 第7-9页 |
第二章 长白山野猪和东北民猪 RXRB 基因 mRNA 组织表达特性分析 | 第9-18页 |
2.1 RXRB 基因的作用机制及研究进展 | 第9-10页 |
2.2 研究材料和方法 | 第10-13页 |
2.2.1 试验动物 | 第10页 |
2.2.2 试验试剂和仪器 | 第10页 |
2.2.3 试验方法 | 第10-13页 |
2.2.3.1 RNA 的提取与浓度测定 | 第10-11页 |
2.2.3.2 cDNA 的获得与检测 | 第11-12页 |
2.2.3.3 引物设计 | 第12-13页 |
2.2.3.4 PCR 条件的建立 | 第13页 |
2.2.3.5 PCR 产物的凝胶电泳分析 | 第13页 |
2.2.3.6 数据分析 | 第13页 |
2.3 结果与分析 | 第13-17页 |
2.3.1 总 RNA 提取结果 | 第13-14页 |
2.3.2 两种猪不同组织中 RXRB 基因 mRNA 表达结果 | 第14-15页 |
2.3.3 四种猪各组织 RXRB 基因 mRNA 表达量相互比较 | 第15-17页 |
2.4 讨论 | 第17-18页 |
第三章 长白山野猪和东北民猪 MYOM-1 基因 mRNA 组织表达及单核苷酸多态性分析与屠宰性状、肌纤维性状间的关联分析 | 第18-35页 |
3.1 MYOM-1 基因的作用机制及研究进展 | 第18-19页 |
3.2 长白山野猪和东北民猪 MYOM1 基因 mRNA 组织表达特性分析 | 第19-24页 |
3.2.1 试验动物 | 第19页 |
3.2.2 试验试剂和仪器 | 第19页 |
3.2.3 试验方法 | 第19-21页 |
3.2.3.1 RNA 的提取与浓度测定 | 第19页 |
3.2.3.2 cDNA 的获得与检测 | 第19页 |
3.2.3.3 引物设计 | 第19-20页 |
3.2.3.4 PCR 条件的建立 | 第20-21页 |
3.2.3.5 PCR 产物的凝胶电泳分析 | 第21页 |
3.2.4 结果与分析 | 第21-24页 |
3.2.4.1 总 RNA 提取 | 第21页 |
3.2.4.2 两种猪不同组织中 MYOM-1 基因 mRNA 表达结果 | 第21-22页 |
3.2.4.3 四种猪各组织 MYOM-1 基因 mRNA 表达量相互比较 | 第22-24页 |
3.3 MYOM-1 基因单核苷酸多态性与肌纤维性状和屠宰性状间的关联分析 | 第24-33页 |
3.3.1 试验样品与生产性状资料 | 第24-25页 |
3.3.1.1 试验东北民猪猪群建立 | 第24页 |
3.3.1.2 屠宰性状记录 | 第24-25页 |
3.3.1.3 血液样本采集 | 第25页 |
3.3.2 东北民猪背最长肌肌纤维密度测定 | 第25页 |
3.3.3 利用 PCR-SSCP 对各样本中的 MYOM-1 基因进行分型 | 第25-33页 |
3.3.3.1 主要仪器设备 | 第25页 |
3.3.3.2 试剂药品 | 第25-26页 |
3.3.3.3 主要试剂的配制方法 | 第26-27页 |
3.3.3.4 实验方法 | 第27-31页 |
3.3.3.5 结果与分析 | 第31-33页 |
3.4 讨论 | 第33-35页 |
第四章 RXRB 基因和 MYOM-1 基因物种间同源性和物种进化情况分析 | 第35-50页 |
4.1 猪 RXRB 基因和 MYOM-1 基因遗传进化与系统发生分析研究进展 | 第35页 |
4.2 研究材料和方法 | 第35-42页 |
4.2.1 研究材料 | 第35-42页 |
4.2.2 研究方法 | 第42页 |
4.3 结果与分析 | 第42-48页 |
4.3.1 使用 MEGA6.0 软件构建进化树 | 第42-45页 |
4.3.2 遗传进化分析 | 第45-48页 |
4.3.2.1 等位基因间的系统发生分析 | 第45-46页 |
4.3.2.2 系统发生分析中出现的问题及原因分析 | 第46页 |
4.3.2.3 各物种内和物种间的遗传变异程度对物种结构及多样性的影响 | 第46-48页 |
4.3.2.4 从系统发生方面分析 RXRB 基因和 MYOM-1基因与物种生理功能间的关系 | 第48页 |
4.4 结论 | 第48-50页 |
第五章 全文总结 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-54页 |
作者简介 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |