摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
第一章 文献综述 | 第11-31页 |
1 乙醛脱氢酶的研究进展 | 第11-18页 |
1.1 人类乙醛脱氢酶的研究进展 | 第11-12页 |
1.2 植物中的乙醛脱氢酶研究 | 第12-14页 |
1.3 水稻乙醛脱氢酶研究进展 | 第14-15页 |
1.4 遗蛋白(ALDH7)的研究进展 | 第15-18页 |
2 植物赖氨酸代谢研究进展 | 第18-25页 |
2.1 植物赖氨酸合成途径 | 第18-20页 |
2.2 植物赖氨酸降解途径 | 第20-23页 |
2.3 水稻赖氨酸和高赖氨酸突变体的研究 | 第23-25页 |
3 有色米和功能性水稻研究进展 | 第25-28页 |
3.1 与类黄酮相关的有色米 | 第25-27页 |
3.2 其他有色米的研究 | 第27-28页 |
3.3 功能性水稻研究综述 | 第28页 |
4 本研究的目的和意义 | 第28-31页 |
第二章 水稻黄胚乳突变体jmw的表型和基因精细定位 | 第31-41页 |
摘要 | 第31页 |
1 材料与方法 | 第31-34页 |
1.1 植物材料 | 第31-32页 |
1.2 田间试验 | 第32页 |
1.3 表型数据测定 | 第32页 |
1.4 比色法测量黄酮总量 | 第32页 |
1.5 SSR/Indel分析 | 第32-34页 |
1.6 数据分析 | 第34页 |
2 结果与分析 | 第34-40页 |
2.1 jmw突变体表型 | 第34-36页 |
2.2 色素的初步分析 | 第36-37页 |
2.3 jmw突变表型受单隐性核基因控制 | 第37-38页 |
2.4 jmw突变表型与野生型品种低谷蛋白性状独立遗传 | 第38页 |
2.5 候选基因定位于第9染色体26kb区域 | 第38-39页 |
2.6 初定位区间的基因预测 | 第39-40页 |
3 讨论 | 第40-41页 |
第三章 OsALDH7的克隆与表达分析 | 第41-57页 |
摘要 | 第41-42页 |
1 材料与方法 | 第42-46页 |
1.1 植物材料 | 第42页 |
1.2 田间试验 | 第42-43页 |
1.3 染色体测序 | 第43页 |
1.4 CAPS标记设计 | 第43页 |
1.5 原核表达蛋白 | 第43页 |
1.6 互补和过表达载体的构建 | 第43-45页 |
1.7 RNA的提取和反转录 | 第45页 |
1.8 定量PCR分析 | 第45-46页 |
2 结果与分析 | 第46-54页 |
2.1 突变基因的确定 | 第46-47页 |
2.2 基因互补和过表达分析 | 第47-48页 |
2.3 OsALDH7基因分析 | 第48-50页 |
2.4 水稻OsALDH7基因组织表达 | 第50页 |
2.5 不同熟期种子中的基因表达 | 第50-51页 |
2.6 OsALDH7受逆境调控表达 | 第51-52页 |
2.7 OsALDH7突变后植株抗旱能力下降 | 第52-53页 |
2.8 成熟种子中其余ALDH家族基因的表达情况 | 第53-54页 |
3 讨论 | 第54-57页 |
第四章 OsALDH7的功能研究 | 第57-69页 |
摘要 | 第57-58页 |
1 材料与方法 | 第58-60页 |
1.1 试验材料 | 第58页 |
1.2 田间试验 | 第58页 |
1.3 HPLC鉴定和测量色素含量 | 第58-59页 |
1.4 氨基酸含量测定 | 第59页 |
1.5 定量PCR分析 | 第59页 |
1.6 酵母氨酸和氨基己二酸的含量测定 | 第59-60页 |
1.7 酵母中过表达OsALDH7 | 第60页 |
2 结果与分析 | 第60-65页 |
2.1 胚乳黄色物质的鉴定和测量 | 第60-61页 |
2.2 野生型和突变体水稻种子中游离氨基酸含量 | 第61-62页 |
2.3 野生型和突变体水稻种子中赖氨酸相关代谢产物含量 | 第62页 |
2.4 与OsALDH7相关的基因表达 | 第62-64页 |
2.5 酵母中过表达水稻OsALDH7基因结果分析 | 第64-65页 |
3 讨论 | 第65-69页 |
第五章 全文小结 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-85页 |
附录 | 第85-93页 |
1 总DNA提取(SDS法)及检测 | 第85-86页 |
1.1 溶液配制 | 第85页 |
1.2 总DNA的提取(SDS法) | 第85-86页 |
1.3 DNA浓度及质量的检测 | 第86页 |
2 SSR标记检测 | 第86-88页 |
2.1 试剂 | 第86-87页 |
2.2 PCR反应 | 第87页 |
2.3 PCR产物的检测 | 第87-88页 |
3 高纯度总DNA的提取(CTAB法) | 第88页 |
4 总RNA的提取 | 第88-89页 |
4.1 胚乳总RNA的提取 | 第88-89页 |
4.2 除胚乳外其他组织RNA的提取 | 第89页 |
5 质粒的转化 | 第89-91页 |
5.1 大肠杆菌的转化 | 第90页 |
5.2 农杆菌的转化 | 第90页 |
5.3 酵母的转化 | 第90-91页 |
6 HPLC测量酵母氨酸和氨基己二酸的原始峰图 | 第91-93页 |
在读期间发表和投稿的论文 | 第93-95页 |
致谢 | 第95页 |