摘要 | 第8-11页 |
ABSTRACT | 第11-13页 |
缩略语表 | 第14-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-31页 |
第一节 奶牛热应激研究进展 | 第15-22页 |
1 热应激的产生 | 第15-16页 |
1.1 外界因素 | 第15-16页 |
1.2 内部因素 | 第16页 |
2 热应激的评定 | 第16-19页 |
2.1 动物机能变化 | 第16-18页 |
2.2 动物生理指标变化 | 第18页 |
2.3 外界环境变化 | 第18-19页 |
3 热应激对奶牛的影响 | 第19-22页 |
3.1 热应激对奶牛采食量的影响 | 第19-20页 |
3.2 热应激对奶牛瘤胃内环境的影响 | 第20-21页 |
3.3 热应激对奶牛生产性能的影响 | 第21-22页 |
第二节 瘤胃微生物的研究方法 | 第22-27页 |
1 稀释平板计数法 | 第22页 |
2 变性梯度凝胶电泳 | 第22-25页 |
2.1 DGGE技术的基本原理 | 第22-23页 |
2.2 DGGE技术的优缺点 | 第23页 |
2.3 DGGE技术在微生物多态性研究中的应用 | 第23-25页 |
3 实时定量PCR | 第25-27页 |
第三节 二氢吡啶简述 | 第27-28页 |
第四节 本研究的目的意义和研究内容 | 第28-31页 |
1 目的意义 | 第28-29页 |
2 研究内容 | 第29-30页 |
3 技术路线 | 第30-31页 |
第二章 试验研究 | 第31-64页 |
第一节 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛机体抗氧化状态的影响 | 第31-40页 |
1 材料与方法 | 第31-34页 |
1.1 试验材料 | 第31-32页 |
1.2 试验方法 | 第32-34页 |
1.3 数据分析 | 第34页 |
2 结果与分析 | 第34-37页 |
2.1 试验期间牛舍环境温湿度的监测 | 第34-35页 |
2.2 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛血清抗氧化状态的影响 | 第35-36页 |
2.3 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛瘤胃抗氧化状态的影响 | 第36-37页 |
3 讨论 | 第37-39页 |
3.1 牛舍环境温湿度的变化 | 第37-38页 |
3.2 奶牛血清的抗氧化状态 | 第38页 |
3.3 奶牛瘤胃液的抗氧化状态 | 第38-39页 |
4 小结 | 第39-40页 |
第二节 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛瘤胃发酵参数的影响 | 第40-45页 |
1 材料与方法 | 第40-41页 |
1.1 试验材料 | 第40页 |
1.2 试验方法 | 第40-41页 |
1.3 数据分析 | 第41页 |
2 结果与分析 | 第41-42页 |
2.1 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛瘤胃液pH值和NH_3-N的影响 | 第41-42页 |
2.2 不同应激水平下添加二氢吡啶对奶牛瘤胃液VFA的影响 | 第42页 |
3 讨论 | 第42-44页 |
3.1 奶牛瘤胃液pH值和NH_3-N的变化 | 第42-43页 |
3.2 奶牛瘤胃液VFA的变化 | 第43-44页 |
4 小结 | 第44-45页 |
第三节 应用REAL-TIME PCR研究不同时期奶牛瘤胃微生物菌群数量的变化 | 第45-50页 |
1 材料与方法 | 第45-46页 |
1.1 试验材料 | 第45页 |
1.2 试验方法 | 第45-46页 |
1.3 数据分析 | 第46页 |
2 结果与分析 | 第46-48页 |
3 讨论 | 第48-49页 |
4 小结 | 第49-50页 |
第四节 应用PCR-DGGE和16S RDNA序列分析研究不同时期奶牛瘤胃细菌区系的组成和动态变化 | 第50-63页 |
1 材料和方法 | 第50-54页 |
1.1 试验材料 | 第50页 |
1.2 试验方法 | 第50-54页 |
1.3 数据分析 | 第54页 |
2 结果与分析 | 第54-61页 |
2.1 瘤胃细菌DGGE图谱分析 | 第54-58页 |
2.2 瘤胃细菌区系中优势菌的序列比较及系统发育分析 | 第58-61页 |
3 讨论 | 第61-62页 |
4 小结 | 第62-63页 |
第五节 总结与展望 | 第63-64页 |
总结 | 第63页 |
创新点 | 第63页 |
展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-75页 |
附录 | 第75-79页 |
致谢 | 第79页 |