摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
1 绪论 | 第10-24页 |
1.1 手性物质及手性分离概述 | 第10-12页 |
1.1.1 手性分离的重要意义 | 第10-11页 |
1.1.2 手性分离的模式及方法 | 第11-12页 |
1.2 毛细管电色谱 | 第12-13页 |
1.3 毛细管电色谱柱 | 第13-18页 |
1.3.1 毛细管电色谱填充柱 | 第13-14页 |
1.3.2 毛细管电色谱开管柱 | 第14页 |
1.3.3 毛细管电色谱整体柱 | 第14-18页 |
1.4 环糊精及其衍生物 | 第18-22页 |
1.4.1 环糊精的结构特征 | 第18-19页 |
1.4.2 β-环糊精的改性 | 第19-20页 |
1.4.3 改性β-环糊精在毛细管电色谱手性分离中的应用 | 第20-22页 |
1.5 本论文的立题依据与研究内容 | 第22-24页 |
1.5.1 立题依据 | 第22-23页 |
1.5.2 研究内容 | 第23-24页 |
2 实验部分 | 第24-30页 |
2.1 主要仪器与试剂 | 第24-25页 |
2.1.1 实验试剂 | 第24-25页 |
2.1.2 实验仪器 | 第25页 |
2.2 甲基丙烯酸缩水甘油酯基-β-环糊精衍生物的合成 | 第25-26页 |
2.3 GMA-β-环糊精整体柱的制备 | 第26-27页 |
2.3.1 毛细管的预处理 | 第26-27页 |
2.3.2 整体柱的制备原理 | 第27页 |
2.3.3 整体柱的制备过程 | 第27页 |
2.4 整体固定相制备条件的优化及其结构表征 | 第27-28页 |
2.4.1 整体固定相制备条件的优化 | 第27-28页 |
2.4.2 整体固定相的红外表征 | 第28页 |
2.4.3 整体固定相的扫描电子显微镜表征 | 第28页 |
2.5 溶液配制 | 第28页 |
2.5.1 不同pH 缓冲溶液的配制 | 第28页 |
2.5.2 样品溶液的配制 | 第28页 |
2.6 电色谱实验条件 | 第28-30页 |
2.6.1 最佳检测波长的确定 | 第28页 |
2.6.2 电色谱实验 | 第28-29页 |
2.6.3 毛细管整体柱的日常维护 | 第29-30页 |
3 结果与讨论 | 第30-45页 |
3.1 整体柱制备条件优化 | 第30-32页 |
3.1.1 单体与交联剂的比例的优化 | 第30页 |
3.1.2 致孔剂用量的优化 | 第30-31页 |
3.1.3 反应时间的优化 | 第31-32页 |
3.1.4 反应温度的优化 | 第32页 |
3.2 GMA-β-环糊精整体柱的表征 | 第32-34页 |
3.2.1 红外表征 | 第32-33页 |
3.2.2 扫描电镜表征 | 第33-34页 |
3.3 手性分离条件的优化 | 第34-36页 |
3.3.1 最佳分离电压的选择 | 第34页 |
3.3.2 最佳缓冲溶液pH 值的选择 | 第34-35页 |
3.3.3 最佳柱温的选择 | 第35-36页 |
3.3.4 最佳电色谱分离条件 | 第36页 |
3.3.5 整体柱的重现性和稳定性 | 第36页 |
3.4 GMA-β-环糊精整体柱的色谱应用 | 第36-45页 |
3.4.1 整体柱在盐酸地匹福林对映体分离中的应用 | 第37-39页 |
3.4.2 整体柱在1-甲基-3-苯基丙胺映体分离中的应用 | 第39-41页 |
3.4.3 整体柱在愈创甘油醚对映体分离中的应用 | 第41-45页 |
结论 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-51页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第51-52页 |
致谢 | 第52-53页 |