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褪黑激素受体MT1活化的信号转导机制研究及内含肽介导的新型GPCR活化检测模型构建

致谢第8-9页
摘要第9-10页
Abstract第10页
缩略词第11-13页
第一章 文献综述第13-39页
    绪言第13-15页
        References第13-15页
    第一节 G蛋白偶联受体活化过程的分子结构特征第15-23页
        1. G蛋白偶联受体存在多个构象第15-16页
        2. G蛋白偶联受体活化后的胞外区(ECL)构象变化第16-17页
        3. G蛋白偶联受体结合配体后跨膜区(TM)构象变化第17-18页
        4. G蛋白偶联受体活化后跨膜区(TM)-胞内区(ICL)构象变化第18-19页
        5. 偏好性信号转导第19页
        References第19-23页
    第二节 褪黑激素及其细胞膜受体MT1和MT2第23-29页
        1. 褪黑激素第23页
        2. 褪黑激素的结构、代谢和分泌第23-25页
        3. 褪黑激素受体第25-27页
        References第27-29页
    第三节 靶向G蛋白偶联受体的药物筛选方法进展第29-39页
        1. 通过分析受体配体结合第29-31页
        2. 通过分析受体活化和信号转导第31-35页
        3. 无需标记的细胞水平检测方法第35页
        结语第35-36页
        References第36-39页
第二章 褪黑激素受体MT1的信号转导机制研究第39-93页
    绪论第39-41页
        References第40-41页
    第一节 MT1结合G蛋白Gs和Gi的分子机制研究第41-62页
        1.1 前言第41页
        1.2 材料与方法第41-45页
            1.2.1 材料第41-42页
            1.2.2 方法第42-45页
        1.3 结果第45-55页
            1.3.1 在HEK293细胞中,外源表达的褪黑激素受体MT引起cAMP水平上升第45-47页
            1.3.2 褪黑激素引起cAMP上升和CREB的活化是受体MT1特异的,而不是细胞特异的第47-49页
            1.3.3 MT1结合Gs蛋白和Gi蛋白调控cAMP水平,没有Gq的参与第49-51页
            1.3.4 ICL2参与了MT1结合Gs蛋白第51-53页
            1.3.5 IM7中NSXXNPXXY motif对MT1结合Gs蛋白有重要影响第53-54页
            1.3.6 Lipid rafts/caveolae对MT1结合Gs蛋白的影响第54-55页
        1.4 讨论第55-58页
        Reference第58-62页
    第二节 褪黑激素受体MT1的内吞途径研究第62-81页
        2.1 前言第62页
        2.2 材料和方法第62-65页
            2.2.1 实验材料第62-63页
            2.2.2 实验方法第63-65页
        2.3 结果第65-74页
            2.3.1 褪黑激素结合MT1能够引起受体的内吞第65-66页
            2.3.2 MT1的内吞定位于内含体并随后回膜第66-68页
            2.3.3 mel引起的MT1内吞是clathrin依赖的内吞过程第68-69页
            2.3.4 MT1的内吞依赖于GRK2和βarrestin2的参与第69-72页
            2.3.5 MT1的内吞依赖于MT1结合Gi蛋白作为前提第72-73页
            2.3.6 MT1活化的Gs/AC/cAMP/PKA信号通路可能参与调节MT1的内吞第73-74页
        2.4 小结与讨论第74-78页
        References第78-81页
    第三节 MT1介导的ERK1/2磷酸化信号通路机制研究第81-89页
        3.1 前言第81页
        3.2 材料与方法第81-83页
            3.2.1 材料第81-82页
            3.2.2 方法第82-83页
        3.3 结果第83-89页
            3.3.1 褪黑激素活化MT1能引起细胞的MAPK/ERK信号通路第83-84页
            3.3.2 MT1结合Gi蛋白引起MAPK/ERK的磷酸化第84-86页
            3.3.3 P13K/PDK1/PKC路径参与了MT1引起的MAPK/ERK的磷酸化第86-88页
            3.3.4 MT1结合Gs蛋白也能引起MAPK/ERK的磷酸化第88-89页
    3.4 小结与讨论第89-91页
    Reference第91-93页
第三章 拼接肽介导的新型GPCR筛选模型的构建第93-109页
    1. 引言第93-94页
    2. 材料和方法第94-97页
        2.1 材料第94-95页
        2.2 Npu DnaE内含肽和Sel DnaE内含肽的克隆和序列分析第95页
        2.3 质粒构建第95-96页
        2.4 细胞培养和转染第96页
        2.5 体内反式剪接和重组蛋白的量化第96-97页
        2.6 蛋白免疫印迹第97页
        2.7 细胞-细胞融合第97页
    3. 结果第97-103页
        3.1 断裂型内含肽Sel DnaE基因的克隆和序列分析第97-98页
        3.2 Sel DnaE介导的体内重建第98-101页
        3.3 Sel DnaE内含肽在哺乳动物系统中反式剪接的特异性第101-102页
        3.4 Sel DnaE内含肽介导趋化因子受体CCR5依赖的细胞-细胞融合检测第102-103页
    4. 讨论第103-106页
    Reference第106-109页
第四章 全文总结第109-111页
    全文总结第109页
    本论文的创新点第109-110页
    本论文的不足第110-111页
发表论文与专利第111页

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