| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第16-32页 |
| 1.1 生物传感器 | 第16-17页 |
| 1.1.1 生物传感器的定义和分类 | 第16页 |
| 1.1.2 生物传感器的特点 | 第16-17页 |
| 1.2 细胞色素c | 第17-20页 |
| 1.2.1 细胞色素c的结构与性质 | 第17页 |
| 1.2.2 细胞色素c在生物传感中的应用 | 第17-20页 |
| 1.3 纳米发光材料 | 第20-31页 |
| 1.3.1 上转换纳米材料在生物传感中的应用 | 第20-26页 |
| 1.3.2 量子点在生物传感中的应用 | 第26-28页 |
| 1.3.3 银纳米簇在生物传感中的应用 | 第28-31页 |
| 1.4 本研究论文的工作内容 | 第31-32页 |
| 第2章 磷酸化诱导多肽与细胞色素c复合物的形成：一种新型的传感平台用于检测蛋白激酶活性 | 第32-46页 |
| 2.1 前言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验部分 | 第33-35页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第33页 |
| 2.2.2 荧光猝灭分析 | 第33页 |
| 2.2.3 CPY水解多肽条件优化 | 第33-34页 |
| 2.2.4 CK2活性和抑制检测 | 第34页 |
| 2.2.5 细胞裂解液的制备 | 第34页 |
| 2.2.6 CDK1活性检测 | 第34-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第35-36页 |
| 2.3.2 Cyt c对FITC分子和FITC-多肽的结合力差别的验证 | 第36-37页 |
| 2.3.3 磷酸化多肽抑制CPY消化研究 | 第37-38页 |
| 2.3.4 实验原理验证 | 第38-39页 |
| 2.3.6 实验条件优化 | 第39-41页 |
| 2.3.7 CK2活性的检测性能 | 第41页 |
| 2.3.8 CK2抑制剂的检测 | 第41-42页 |
| 2.3.9 方法选择性研究 | 第42页 |
| 2.3.10 细胞裂解液中CK2活性的检测 | 第42-43页 |
| 2.3.11 方法通用性研究 | 第43-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-46页 |
| 第3章 一步法合成适配体功能化的碲化镉量子点用于溶菌酶的免标记检测 | 第46-56页 |
| 3.1 前言 | 第46-47页 |
| 3.2 实验部分 | 第47-48页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第47页 |
| 3.2.2 碲化镉量子点的制备 | 第47-48页 |
| 3.2.3 Cyt c浓度优化 | 第48页 |
| 3.2.4 pH优化 | 第48页 |
| 3.2.5 溶菌酶的检测步骤 | 第48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-55页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第48-49页 |
| 3.3.2 功能化碲化镉量子点的表征 | 第49-51页 |
| 3.3.3 实验原理验证 | 第51-52页 |
| 3.3.4 Cyt c猝灭荧光能力的考察 | 第52页 |
| 3.3.5 实验条件优化 | 第52-53页 |
| 3.3.6 溶菌酶检测的灵敏度和选择性 | 第53-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 第4章 仿生合成硫化镉量子点用于B-分泌酶活性的免标记荧光检测 | 第56-65页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-58页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第57页 |
| 4.2.2 硫化镉量子点的合成 | 第57页 |
| 4.2.3 检测BACE1活性和抑制作用 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-64页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第58页 |
| 4.3.2 实验原理的可行性验证 | 第58-59页 |
| 4.3.3 多肽合成硫化镉量子点的性质考察 | 第59-61页 |
| 4.3.4 实验条件优化 | 第61-62页 |
| 4.3.5 检测方法的响应性能研究 | 第62-63页 |
| 4.3.6 BACE1抑制剂检测 | 第63-64页 |
| 4.4 小结 | 第64-65页 |
| 第5章 构建基于发光共振能量转移上转换纳米复合物用于双氧水和葡萄糖的检测 | 第65-83页 |
| 5.1 前言 | 第65-66页 |
| 5.2 实验部分 | 第66-69页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第66-67页 |
| 5.2.2 NaYF_4:Yb/Tm(30/0.5 mol%)上转换核纳米颗粒的制备 | 第67页 |
| 5.2.3 NaYF_4:Yb,Tm@NaYF_4上转换核壳纳米颗粒的制备 | 第67页 |
| 5.2.4 水溶性上转换纳米颗粒的制备 | 第67-68页 |
| 5.2.5 DNA为模板的银纳米颗粒的合成 | 第68页 |
| 5.2.6 DNA-AgNPs/UCNP复合物的制备 | 第68页 |
| 5.2.7 双氧水的检测 | 第68页 |
| 5.2.8 葡萄糖的检测 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第69-81页 |
| 5.3.1 基于DNA-AgNPs/UCNP复合物用于检测双氧水和葡萄糖的原理验证 | 第69-70页 |
| 5.3.2 上转换纳米颗粒的表征 | 第70-72页 |
| 5.3.3 DNA-AgNPs和DNA-AgNPs/UCNP复合物的表征 | 第72-74页 |
| 5.3.4 探究UCNPs对DNA-AgNPs的响应 | 第74-75页 |
| 5.3.5 探究DNA-AgNPs/UCNP复合物对双氧水的响应 | 第75-77页 |
| 5.3.6 探究DNA-AgNPs/UCNP复合物对葡萄糖的响应 | 第77页 |
| 5.3.7 方法的选择性研究 | 第77-79页 |
| 5.3.8 探究DNA-AgNPs/UCNP对血清中葡萄糖的响应 | 第79-81页 |
| 5.4 小结 | 第81-83页 |
| 第6章 基于银纳米簇荧光增强的策略用于碱性磷酸酶活性的检测 | 第83-93页 |
| 6.1 前言 | 第83-84页 |
| 6.2 实验部分 | 第84-85页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第84页 |
| 6.2.2 银纳米簇的制备 | 第84页 |
| 6.2.3 ALP酶活性的检测 | 第84-85页 |
| 6.2.4 琼脂糖电泳实验 | 第85页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第85-92页 |
| 6.3.1 实验设计原理与验证 | 第85-87页 |
| 6.3.2 银纳米簇的性质考察 | 第87-88页 |
| 6.3.3 实验条件优化 | 第88-89页 |
| 6.3.4 检测方法的响应性能研究 | 第89-90页 |
| 6.3.5 抑制剂的检测 | 第90-91页 |
| 6.3.6 稀释血清中ALP酶的检测 | 第91-92页 |
| 6.4 小结 | 第92-93页 |
| 结论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-120页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
