| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 1. 前言 | 第13-25页 |
| 1.1 海洋红藻的研究价值 | 第13-17页 |
| 1.1.1 红藻在进化上的地位 | 第13-15页 |
| 1.1.2 红藻在海洋生态系统中的地位 | 第15页 |
| 1.1.3 海洋红藻的研究价值 | 第15-17页 |
| 1.2 藻胆蛋白 | 第17-22页 |
| 1.2.1 藻红蛋白 | 第19-20页 |
| 1.2.2 藻蓝蛋白 | 第20-21页 |
| 1.2.3 别藻蓝蛋白 | 第21-22页 |
| 1.3 藻胆体 | 第22-25页 |
| 2. 藻红蛋白的亚基组成分析(一) —SDS-PAGE分析藻红蛋白亚基组成时的适宜条件 | 第25-40页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.2 结果 | 第27-35页 |
| 2.2.1 藻红蛋白亚基组成 | 第27-28页 |
| 2.2.2 四种因素对SDS-PAGE中藻红蛋白亚基分离效果的影响 | 第28-34页 |
| 2.2.3 亚基的分子质量 | 第34-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-40页 |
| 2.3.1 影响藻红蛋白SDS-PAGE的关键因素 | 第35-37页 |
| 2.3.2 SDS浓度和离子浓度对标准蛋白迁移的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.3 作用机制探讨 | 第38-40页 |
| 3. 藻红蛋白的亚基组成分析(二) —多管藻藻红蛋白中的42.1 kDa与53.7 kDa多肽 | 第40-51页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-47页 |
| 3.2.1 SDS-PAGE分析藻红蛋白亚基组成 | 第41-42页 |
| 3.2.2 梯度native-PAGE制备之R-PE SDS-PAGE | 第42-45页 |
| 3.2.3 R-PE第二次SDS-PAGE | 第45-46页 |
| 3.2.4 光照对R-PE的影响 | 第46-47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-51页 |
| 3.3.1 42.1 kDa和53.7 kDa条带的形成原因 | 第47-49页 |
| 3.3.2. γ亚基对于R-PE聚合体稳定性的作用 | 第49-51页 |
| 4. 多管藻藻红蛋白的种类和聚合体形式(一) —直接提取的粗藻胆蛋白分析 | 第51-64页 |
| 4.1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 4.2 结果与分析 | 第52-63页 |
| 4.2.1 50 mmol/L磷酸缓冲液浸提粗藻胆蛋白Sephadex G-150层析 | 第52-55页 |
| 4.2.2 水浸提粗藻胆蛋白Sephadex G-150层析 | 第55-58页 |
| 4.2.3 水浸提粗藻胆蛋白PE315-PE360部分第二次Sephadex G-150层析 | 第58-61页 |
| 4.2.4 水浸提粗藻胆蛋白放置9 d后Sephadex G-150层析 | 第61-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-64页 |
| 5. 多管藻藻红蛋白的种类和聚合体形式(二) —藻胆体中的藻红蛋白 | 第64-72页 |
| 5.1 材料与方法 | 第64-65页 |
| 5.2 结果与分析 | 第65-70页 |
| 5.2.1 解离藻胆体的蔗糖密度梯度离心 | 第65-68页 |
| 5.2.2 解离藻胆体的native-PAGE分析 | 第68-70页 |
| 5.3 讨论 | 第70-72页 |
| 6. 多管藻藻胆体的光谱特性 | 第72-81页 |
| 6.1 材料与方法 | 第72-73页 |
| 6.2 结果与分析 | 第73-78页 |
| 6.2.1 藻胆体荧光发射光谱 | 第73-74页 |
| 6.2.2 藻胆体解离后的荧光发射光谱 | 第74-75页 |
| 6.2.3 藻红蛋白的荧光发射光谱 | 第75-77页 |
| 6.2.4 藻胆体荧光激发光谱 | 第77-78页 |
| 6.3 讨论 | 第78-81页 |
| 7. 多管藻藻胆体稳定性的研究(一) —低浓度PBS对藻胆体的解离作用 | 第81-90页 |
| 7.1 材料与方法 | 第81页 |
| 7.2 结果与分析 | 第81-90页 |
| 7.2.1 PBS浓度对藻胆体稳定性的影响 | 第81-82页 |
| 7.2.2 500 mmol/L PBS条件下不同时间及调回1.0 mol/L后藻胆体荧光特性的变化 | 第82-83页 |
| 7.2.3 500 mmol/L PSS处理后藻胆体的密度梯度离xin | 第83-90页 |
| 8. 多管藻藻胆体稳定性的研究(二) —不同离子对藻胆体稳定性的影响 | 第90-97页 |
| 8.1 材料与方法 | 第90页 |
| 8.2 结果 | 第90-94页 |
| 8.2.1 Na~+、Mg~(2+)、Cl~-、SO_4~(2-)对藻胆体稳定性的影响 | 第90-91页 |
| 8.2.2 一价阳离子对藻胆体稳定性的影响 | 第91-93页 |
| 8.2.3 不同一价阴离子对藻胆体稳定性的影响 | 第93页 |
| 8.2.4 Zn~(2+)对藻胆体稳定性的影响 | 第93-94页 |
| 8.3 讨论 | 第94-97页 |
| 9. 多管藻藻胆体的结构分析(一) —藻红蛋白-藻蓝蛋白复合物的特性分析 | 第97-111页 |
| 9.1 材料与方法 | 第97页 |
| 9.2 结果与分析 | 第97-108页 |
| 9.2.1 藻红蛋白-藻蓝蛋白复合物的制备 | 第97-98页 |
| 9.2.2 藻胆蛋白各组分的吸收与荧光特性 | 第98-103页 |
| 9.2.3 藻胆蛋白各组分的差光谱分析 | 第103-108页 |
| 9.3 讨论 | 第108-111页 |
| 9.3.1 587 nm发色团的位置 | 第108-110页 |
| 9.3.2 587 nm发色团的作用 | 第110-111页 |
| 10. 多管藻藻胆体的结构分析(二) —藻红蛋白与藻胆体的稳定化处理 | 第111-117页 |
| 10.1 材料与方法 | 第111页 |
| 10.2 结果与分析 | 第111-115页 |
| 10.2.1 甲醛交联藻红蛋白 | 第111-112页 |
| 10.2.2 甲醛交联藻胆体 | 第112-114页 |
| 10.2.3 EDC交联藻胆体 | 第114-115页 |
| 10.3 讨论 | 第115-117页 |
| 11. 多管藻藻胆体的结构分析(三) —藻红蛋白与藻胆体的酶切分析 | 第117-131页 |
| 11.1 材料与方法 | 第117-118页 |
| 11.2 结果与分析 | 第118-128页 |
| 11.2.1 藻红蛋白的酶切分析 | 第118-120页 |
| 11.2.2 藻胆体的酶切分析 | 第120-128页 |
| 11.3 讨论 | 第128-131页 |
| 11.3.1 γ亚基的位置 | 第128-129页 |
| 11.3.2 两种蛋白酶对藻红蛋白和藻胆体的作用位点 | 第129-131页 |
| 12. 关于红藻藻胆体结构的探讨 | 第131-134页 |
| 12.1 蓝藻中的藻胆体 | 第131-132页 |
| 12.2 红藻中的藻胆体 | 第132-134页 |
| 总结 | 第134-135页 |
| 参考文献 | 第135-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 个人简历 | 第144页 |
| 发表的学术论文 | 第144页 |
