| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第16-49页 |
| 1.1 过氧化氢概述 | 第16-19页 |
| 1.2 H_2O_2的检测方法分类 | 第19-21页 |
| 1.2.1 蛋白检测法 | 第19-20页 |
| 1.2.2 碳纳米管检测法 | 第20页 |
| 1.2.3 超极化检测法 | 第20页 |
| 1.2.4 超声检测法 | 第20-21页 |
| 1.2.5 质谱检测法 | 第21页 |
| 1.2.6 化学发光 | 第21页 |
| 1.2.7 酶检测法 | 第21页 |
| 1.3 生物体中H_2O_2光学探针的构建方式 | 第21-33页 |
| 1.3.1 一般光学探针的构建方式 | 第22-23页 |
| 1.3.2 生物体中H_2O_2光学探针的设计标准 | 第23页 |
| 1.3.3 检测H_2O_2的分子光学探针 | 第23-33页 |
| 1.3.3.1 早期检测H_2O_2的分子光学探针 | 第24-27页 |
| 1.3.3.2 单硼酸酯光学探针检测内源性H202 | 第27-29页 |
| 1.3.3.3 捕获型H_2O_2识别光学探针 | 第29-31页 |
| 1.3.3.4 靶向型H_2O_2光学探针 | 第31-33页 |
| 1.4 检测H_2O_2的光学纳米探针 | 第33-47页 |
| 1.4.1 基于功能化半导体量子点的H_2O_2响应光学纳米探针 | 第33-34页 |
| 1.4.2 基于碳纳米材料的H_2O_2响应探针 | 第34-39页 |
| 1.4.3 基于过氧化物模拟酶的多氧金属盐簇H202探针 | 第39-40页 |
| 1.4.4 基于上转换纳米材料的H_2O_2响应探针 | 第40-41页 |
| 1.4.5 基于贵金属及贵金属氧化物纳米材料的H202响应探针 | 第41-43页 |
| 1.4.6 H_2O_2响应聚合物纳米探针 | 第43-47页 |
| 1.5 开展本研究的目的及本论文的主要研究工作 | 第47-49页 |
| 第2章 苯硼酸酯功能化部花菁探针设计及H_2O_2的快速识别与检测 | 第49-64页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 仪器与试剂 | 第50-51页 |
| 2.2.1 仪器 | 第50页 |
| 2.2.2 试剂 | 第50-51页 |
| 2.3 实验方法 | 第51-57页 |
| 2.3.1 H_2O_2识别位点4-溴甲基苯硼酸的合成与表征 | 第51-52页 |
| 2.3.2 BMCs的合成1-6 | 第52-55页 |
| 2.3.3 标准物SP-Br的合成 | 第55-56页 |
| 2.3.4 量子产率的测定 | 第56页 |
| 2.3.5 光谱测量和探针响应速率常数的测定 | 第56页 |
| 2.3.6 DFT理论计算 | 第56-57页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第57-63页 |
| 2.4.1 H_2O_2响应探针BMCs的设计 | 第57页 |
| 2.4.2 H_2O_2响应探针BMCs的合成及响应机理验证 | 第57-59页 |
| 2.4.3 H_2O_2与探针BMCs的反应动力学研究 | 第59-61页 |
| 2.4.4 BMC3对H_2O_2检测的滴定曲线 | 第61-62页 |
| 2.4.5 BMCs对H_2O_2响应速度的DFT理论计算 | 第62-63页 |
| 2.5 小结 | 第63-64页 |
| 第3章 激活式双光子石墨烯量子点比率成像活体中的H_2O_2 | 第64-83页 |
| 3.1 引言 | 第64-65页 |
| 3.2 仪器与试剂 | 第65-66页 |
| 3.2.1 仪器 | 第65-66页 |
| 3.2.2 试剂 | 第66页 |
| 3.3 实验方法 | 第66-70页 |
| 3.3.1 双色双光子纳米探针TPGQD~(420)-BMC3的制备 | 第66-67页 |
| 3.3.2 TPGQD~(420)-BMC3单光子量子产率和双光子截面积测量 | 第67-68页 |
| 3.3.3 细胞培养和细胞毒性分析 | 第68页 |
| 3.3.4 小动物培养和肿瘤组织切片 | 第68-69页 |
| 3.3.5 TPGQD~(420)-BMC3活体中的双发射TPM成像 | 第69-70页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第70-82页 |
| 3.4.1 TPGQD~(420)-BMC3成像H_2O_2的机理 | 第70页 |
| 3.4.2 双光子石墨烯量子点TPGQD~(420)制备 | 第70-72页 |
| 3.4.3 BMCs对TPGQD~(420)荧光调控 | 第72-73页 |
| 3.4.4 缓冲液中TPGQD~(420)-BMC3对H_2O_2的荧光响应 | 第73-78页 |
| 3.4.5 双光子比率成像细胞中的H_2O_2 | 第78-80页 |
| 3.4.6 双光子比率成像体内H_2O_2 | 第80-82页 |
| 3.5 小结 | 第82-83页 |
| 第4章 H_2O_2诱导信号放大用于可视化组织活检 | 第83-102页 |
| 4.1 前言 | 第83-84页 |
| 4.2 仪器与试剂 | 第84-85页 |
| 4.2.1 仪器 | 第84-85页 |
| 4.2.2 试剂 | 第85页 |
| 4.3 实验方法 | 第85-89页 |
| 4.3.1 PMPC-Bpe的合成 | 第85-87页 |
| 4.3.2 PMPC-Bpe胶束制备 | 第87页 |
| 4.3.3 临界胶束浓度的测定 | 第87页 |
| 4.3.4 PMPC-Bpe胶束对淀粉包载量测定 | 第87-88页 |
| 4.3.5 细胞毒性分析 | 第88页 |
| 4.3.6 癌症组织切片的制备及染色 | 第88-89页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第89-100页 |
| 4.4.1 基于H_2O_2诱导的信号放大的可视化组织活检机理 | 第89页 |
| 4.4.2 两亲性聚合物的合成及自组装 | 第89-94页 |
| 4.4.3 PMPC-Bpe对H_2O_2的工作原理及可行性分析 | 第94-96页 |
| 4.4.4 H_2O_2识别信号放大体系的灵敏度及选择性 | 第96-97页 |
| 4.4.5 可视化策略用于癌症发展过程中H_2O_2识别组织活检 | 第97-100页 |
| 4.5 小结 | 第100-102页 |
| 第5章 借助生物体原位信号放大超灵敏检测细胞内H_2O_2产生 | 第102-123页 |
| 5.1 前言 | 第102-104页 |
| 5.2 仪器与试剂 | 第104-105页 |
| 5.2.1 仪器 | 第104页 |
| 5.2.2 试剂 | 第104-105页 |
| 5.3 实验方法 | 第105-110页 |
| 5.3.1 PMPC-Bpe-BHQ2的合成 | 第105-108页 |
| 5.3.2 PMPC-Bpe-BHQ2胶束制备 | 第108页 |
| 5.3.3 临界胶束浓度的测定 | 第108页 |
| 5.3.4 临界胶束浓度聚集数N_m计算 | 第108页 |
| 5.3.5 PMPC-Bpe-BHQ2胶束对染料SQ的包载量 | 第108-109页 |
| 5.3.6 细胞毒性分析 | 第109页 |
| 5.3.7 原位信号放大成像细胞中H_2O_2的产生 | 第109页 |
| 5.3.8 活体中成像睾丸酮刺激下H_2O_2的产生 | 第109-110页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第110-122页 |
| 5.4.1 原位级联信号放大策略用于超灵敏检测H_2O_2的机理 | 第110页 |
| 5.4.2 BHQ2对SQ的荧光淬灭 | 第110-112页 |
| 5.4.3 两亲性聚合物PMPC-Bpe-BHQ2的合成及响应机理 | 第112-117页 |
| 5.4.4 PMPC-Bpe-BHQ2@SQ纳米材料的构建 | 第117-119页 |
| 5.4.5 细胞内超灵敏检测H_2O_2的产生 | 第119-122页 |
| 5.4.6 活体中成像睾丸酮诱导H_2O_2的产生 | 第122页 |
| 5.5 小结 | 第122-123页 |
| 结论与展望 | 第123-125页 |
| 参考文献 | 第125-148页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第148-150页 |
| 附录B 代表化合物结构表征谱图 | 第150-163页 |
| 致谢 | 第163-164页 |
