| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-26页 |
| 1.1 文献综述 | 第14-24页 |
| 1.1.1 皮肤毛囊生物学综述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 毛囊发育的分子调控 | 第15-19页 |
| 1.1.3 其他因素对毛囊周期性的影响 | 第19-20页 |
| 1.1.4 转录组技术 | 第20-21页 |
| 1.1.5 内蒙古绒山羊毛囊发育研究进展 | 第21-24页 |
| 1.2 本试验的目的与意义 | 第24-25页 |
| 1.3 本试验技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 光控对绒山羊次级毛囊周期性变化规律的影响 | 第26-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26-27页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-30页 |
| 2.2.1 不同发育周期毛囊形态变化 | 第27-28页 |
| 2.2.2 光控对毛囊发育的影响 | 第28-30页 |
| 2.3 讨论 | 第30页 |
| 2.4 本章结论 | 第30-31页 |
| 第三章 光控对绒山羊血液中激素水平及绒毛性状的影响 | 第31-36页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第31页 |
| 3.1.2 主要仪器和试剂 | 第31页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第31-32页 |
| 3.1.4 数据处理及分析 | 第32页 |
| 3.2 结果与分析 | 第32-33页 |
| 3.2.1 光控对褪黑激素和催乳素的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.2 光控对绒毛生长和绒性状的影响 | 第33页 |
| 3.3 讨论 | 第33-35页 |
| 3.4 本章结论 | 第35-36页 |
| 第四章 光控对皮肤组织的转录组表达的影响 | 第36-55页 |
| 4.1 材料与方法 | 第36-39页 |
| 4.1.1 试验动物及样品采集 | 第36页 |
| 4.1.2 主要试剂和仪器 | 第36页 |
| 4.1.3 总RNA提取 | 第36页 |
| 4.1.4 RNA质量检测 | 第36-37页 |
| 4.1.5 RNA-seq建库及测序 | 第37页 |
| 4.1.6 数据处理及分析 | 第37-38页 |
| 4.1.7 反转录及荧光定量PCR | 第38-39页 |
| 4.1.8 荧光定量PCR相关数据分析 | 第39页 |
| 4.2 结果与分析 | 第39-53页 |
| 4.2.1 RNA提取与质量检测 | 第39页 |
| 4.2.2 RNA-seq原始测序数据质量控制 | 第39-40页 |
| 4.2.3 基因组mapping结果 | 第40-42页 |
| 4.2.4 荧光定量PCR产物溶解峰图分析 | 第42页 |
| 4.2.5 测序结果可靠性验证 | 第42-44页 |
| 4.2.6 正常光照条件下不同发育时期转录组分析 | 第44-50页 |
| 4.2.7 控制光照对毛囊发育的转录组分析 | 第50-53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-54页 |
| 4.4 本章结论 | 第54-55页 |
| 第五章 SIRNA干扰成纤维细胞CSDC2基因对毛囊相关基因表达的影响 | 第55-63页 |
| 5.1 材料与方法 | 第55-58页 |
| 5.1.1 试验材料与试剂 | 第55页 |
| 5.1.2 细胞的培养与传代 | 第55-56页 |
| 5.1.3 细胞冻存与复苏 | 第56页 |
| 5.1.4 细胞转染试验 | 第56-57页 |
| 5.1.5 QRT-PCR检测Csdc2及毛囊相关基因的表达 | 第57-58页 |
| 5.2 结果与分析 | 第58-60页 |
| 5.2.1 细胞形态学观察 | 第58-59页 |
| 5.2.2 si-Csdc2干扰后Csdc2表达变化 | 第59页 |
| 5.2.3 AlamarBlue法检测si-Csdc2转染对小鼠成纤维细胞NIH/3T3增殖的作用 | 第59-60页 |
| 5.2.4 干扰Csdc2基因后，毛囊相关基因在mRNA水平表达变化 | 第60页 |
| 5.3 讨论 | 第60-62页 |
| 5.4 本章结论 | 第62-63页 |
| 第六章 全文结论与创新点 | 第63-64页 |
| 6.1 全文结论 | 第63页 |
| 6.2 创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-78页 |
| 附录 | 第78-132页 |
| 致谢 | 第132-134页 |
| 作者简介 | 第134页 |
