| 中文摘要 | 第3-9页 |
| ABSTRACT | 第9-15页 |
| 第一章 GDF11对高脂喂养的ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化 | 第20-48页 |
| 1.1 前言 | 第20页 |
| 1.2 实验试剂及器材 | 第20-23页 |
| 1.2.1 实验试剂 | 第20-22页 |
| 1.2.2 溶液配制 | 第22-23页 |
| 1.3 实验方法 | 第23-35页 |
| 1.3.1 ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化模型的制备 | 第23-24页 |
| 1.3.2 动物分组和干预 | 第24页 |
| 1.3.3 病毒转染测定 | 第24-25页 |
| 1.3.4 ApoE~(-/-)小鼠代谢及炎性因子水平测定 | 第25-26页 |
| 1.3.5 ApoE~(-/-)小鼠主动脉内皮依赖性血管舒张功能测定 | 第26-27页 |
| 1.3.6 ApoE~(-/-)小鼠主动脉内皮凋亡检测 | 第27-28页 |
| 1.3.7 ApoE~(-/-)小鼠主动脉斑块表面积及横断面积测定 | 第28-29页 |
| 1.3.8 ApoE~(-/-)小鼠主动脉炎性病变测定 | 第29-34页 |
| 1.3.9 主动脉Smad2/3、P-Smad2/3、AMPK、P-AMPK、eNOS、P-eNOS、Akt、P-Akt、PKA及P-PKA水平测定 | 第34-35页 |
| 1.4 统计分析 | 第35页 |
| 1.5 结果 | 第35-42页 |
| 1.5.1 AAV-GDF11注射的小鼠体内持续表达GDF11/8 | 第35-36页 |
| 1.5.2 GDF11对ApoE~(-/-)小鼠代谢及炎性因子水平的影响 | 第36-37页 |
| 1.5.3 GDF11改善ApoE~(-/-)小鼠主动脉血管内皮依赖性舒张功能 | 第37-38页 |
| 1.5.4 GDF11对ApoE~(-/-)小鼠主动脉血管内皮凋亡及形态的影响 | 第38-39页 |
| 1.5.5 GDF11减少高脂喂养的ApoE~(-/-)小鼠主动脉粥样斑块面积 | 第39-40页 |
| 1.5.6 GDF11减轻ApoE~(-/-)小鼠主动脉炎性浸润和炎性因子mRNA水平 | 第40-41页 |
| 1.5.7 GDF11激活了主动脉TGF-β/Smad和AMPK/eNOS信号通路 | 第41-42页 |
| 1.6 讨论 | 第42-44页 |
| 1.7 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 第二章 GDF11对软脂酸环境下小鼠主动脉内皮细胞的保护作用及机制研究 | 第48-64页 |
| 2.1 前言 | 第48页 |
| 2.2 实验试剂和器材 | 第48-52页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第48-50页 |
| 2.2.2 溶液配制 | 第50-51页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第51-52页 |
| 2.3 细胞培养及分组 | 第52-53页 |
| 2.3.1 小鼠主动脉内皮细胞培养 | 第52-53页 |
| 2.3.2 细胞分组及检测 | 第53页 |
| 2.4 观察指标与测定方法 | 第53-55页 |
| 2.4.1 活性氧的测定 | 第53-54页 |
| 2.4.2 RT-PCR检测细胞抗氧化酶SOD,GPX-1和TXN的mRNA水平 | 第54页 |
| 2.4.3 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第54页 |
| 2.4.4 Western blot分析细胞Bcl-2、Bax和Cleaved-caspase3的表达 | 第54页 |
| 2.4.5 免疫荧光染色法检测细胞P-Smad2/3表达水平 | 第54-55页 |
| 2.4.6 Western blot分析细胞AMPK、P-AMPK、eNOS、P-eNOS、Akt、P-Akt、PKA、P-PKA的表达 | 第55页 |
| 2.5 统计分析 | 第55页 |
| 2.6 结果 | 第55-59页 |
| 2.6.1 GDF11对PA诱导的ACECs氧化应激的影响 | 第55-56页 |
| 2.6.2 GDF11对PA诱导的ACECs凋亡的影响 | 第56-57页 |
| 2.6.3 GDF11激活细胞内TGF-β/Smad信号通路 | 第57-58页 |
| 2.6.4 GDF11激活细胞内AMPK/eNOS信号通路 | 第58-59页 |
| 2.7 讨论 | 第59-61页 |
| 2.8 结论 | 第61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 全文结论 | 第64-65页 |
| 综述 | 第65-74页 |
| 参考文献 | 第71-74页 |
| 攻读学位期间成果 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
