摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
缩略词表 | 第6-7页 |
目录 | 第7-10页 |
第1章 前言 | 第10-23页 |
1.1 动物的再生 | 第10-12页 |
1.2 海参的再生 | 第12-20页 |
1.2.1 枝手目海参的再生模式 | 第12-13页 |
1.2.2 盾手目海参的再生模式 | 第13页 |
1.2.3 无足目海参的再生模式 | 第13页 |
1.2.4 海参吐脏再生 | 第13-17页 |
1.2.5 海参体壁的再生 | 第17页 |
1.2.6 海参肌肉的再生 | 第17-19页 |
1.2.7 海参幼体的再生 | 第19页 |
1.2.8 海参再生分子机制的研究 | 第19-20页 |
1.3 丝氨酸蛋白酶 | 第20-21页 |
1.3.1 胰蛋白酶样丝氨酸蛋白酶 | 第20-21页 |
1.4 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
第2章 仿刺参TLS基因全长和内含子序列的克隆及序列分析 | 第23-41页 |
2.1 前言 | 第23页 |
2.2 材料与方法 | 第23-30页 |
2.2.1 样品处理 | 第23页 |
2.2.2 载体和菌株 | 第23页 |
2.2.3 实验仪器和设备 | 第23-24页 |
2.2.4 总RNA提取试剂及器具 | 第24页 |
2.2.5 反转录和PCR相关试剂 | 第24页 |
2.2.6 胶及质粒回收试剂 | 第24页 |
2.2.7 琼脂糖凝胶电泳试剂 | 第24-25页 |
2.2.8 培养基的配制 | 第25页 |
2.2.9 总RNA的提取 | 第25页 |
2.2.10 RT-PCR | 第25-26页 |
2.2.11 TLS基因全长的获得 | 第26页 |
2.2.12 TLS基因内含子序列的获得 | 第26-29页 |
2.2.13 生物信息学分析 | 第29-30页 |
2.3 结果 | 第30-39页 |
2.3.1 TLS基因全长 | 第30-31页 |
2.3.2 TLS基因内含子序列 | 第31-32页 |
2.3.3 生物信息学分析 | 第32-37页 |
2.3.4 仿刺参TLS蛋白进化分析 | 第37-39页 |
2.4 讨论 | 第39-40页 |
2.5 小结 | 第40-41页 |
第3章 仿刺参TLS基因在成体组织器官中的表达部位 | 第41-51页 |
3.1 前言 | 第41页 |
3.2 材料与方法 | 第41-48页 |
3.2.1 组织材料 | 第41页 |
3.2.2 原位杂交药品配制及试剂盒 | 第41-44页 |
3.2.3 实验仪器 | 第44页 |
3.2.4 合成探针的引物 | 第44页 |
3.2.5 RNA原位杂交的原理 | 第44页 |
3.2.6 仿刺参组织固定 | 第44页 |
3.2.7 组织脱水 | 第44-45页 |
3.2.8 组织透明 | 第45页 |
3.2.9 组织浸蜡包埋 | 第45页 |
3.2.10 切片、展片及烘片 | 第45-46页 |
3.2.11 探针合成 | 第46-47页 |
3.2.12 石蜡切片原位杂交的过程 | 第47-48页 |
3.3 结果 | 第48-50页 |
3.4 讨论 | 第50页 |
3.5 小结 | 第50-51页 |
第4章 仿刺参TLS基因在不同组织的不同再生阶段的表达模式 | 第51-61页 |
4.1 前言 | 第51页 |
4.2 材料与方法 | 第51-54页 |
4.2.1 材料处理 | 第51-52页 |
4.2.2 相关试剂 | 第52页 |
4.2.3 实验仪器和器材 | 第52页 |
4.2.4 引物 | 第52页 |
4.2.5 不同发育阶段组织的处理 | 第52页 |
4.2.6 总RNA中基因组DNA的去除 | 第52-53页 |
4.2.7 反转录反应 | 第53页 |
4.2.8 Real Time PCR反应 | 第53-54页 |
4.2.9 Real Time PCR数据的处理 | 第54页 |
4.3 结果 | 第54-59页 |
4.3.1 仿刺参肠再生情况的观察 | 第54-56页 |
4.3.2 仿刺参TLS基因在不同再生时期的表达模式 | 第56-59页 |
4.4 讨论 | 第59-60页 |
4.5 小结 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |