| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-22页 |
| 参考文献 | 第19-22页 |
| 第一部分 理论研究 | 第22-30页 |
| 1 祖国医学对脊髓损伤的认识 | 第22-25页 |
| 1.1 病因病机 | 第22页 |
| 1.2 治则治法 | 第22页 |
| 1.3 脊髓损伤的中医药治疗 | 第22-24页 |
| 1.4 “脊髓康”的组方原则及处方分析 | 第24-25页 |
| 1.5 “脊髓康”前期研究基础及成果 | 第25页 |
| 2 西医学对脊髓损伤的认识 | 第25-27页 |
| 2.1 发病机制 | 第25-26页 |
| 2.2 脊髓损伤的修复机制 | 第26页 |
| 2.3 脊髓损伤的西医药治疗 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 第二部分 Nogo-NgR信号通路在神经再生过程中的动态表达及意义 | 第30-48页 |
| 1 材料与方法 | 第30-37页 |
| 1.1 实验动物 | 第30页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 1.3 主要药物和试剂 | 第31页 |
| 1.4 动物分组 | 第31页 |
| 1.5 模型制备 | 第31-32页 |
| 1.6 标本采集 | 第32-33页 |
| 1.7 免疫组化法观察脊髓组织Nogo-A、NgR的蛋白表达 | 第33页 |
| 1.8 Western blottingting检测脊髓组织Nogo-A、NgR的蛋白表达 | 第33-35页 |
| 1.9 荧光定量PCR法测定脊髓组织Nogo-A mRNA、NgR mRNA表达 | 第35-37页 |
| 1.10 统计学处理 | 第37页 |
| 2 结果 | 第37-43页 |
| 2.1 大鼠脊髓组织中Nogo-A蛋白的免疫组化动态表达 | 第38-39页 |
| 2.2 大鼠脊髓组织中NgR蛋白的免疫组化动态表达 | 第39-40页 |
| 2.3 大鼠脊髓组织中Nogo-A蛋白的Western blottingting动态表达 | 第40-42页 |
| 2.4 大鼠脊髓组织中NgR蛋白的Western blottingting动态表达 | 第42页 |
| 2.5 大鼠脊髓组织中Nogo-A mRNA的动态表达 | 第42-43页 |
| 2.6 大鼠脊髓组织中NgR mRNA的动态表达 | 第43页 |
| 3 讨论 | 第43-46页 |
| 3.1 Nogo的分子生物学特点 | 第43-44页 |
| 3.2 Nogo-A在大鼠脊髓组织中的动态表达 | 第44-45页 |
| 3.3 NgR的分子生物学特点 | 第45页 |
| 3.4 NgR在大鼠脊髓组织中的动态表达 | 第45-46页 |
| 4 结论 | 第46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 第三部分 中药“脊髓康”促进神经再生的作用研究 | 第48-67页 |
| 实验一 “脊髓康”对大鼠脊髓损伤后组织形态结构的影响 | 第48-56页 |
| 1 材料与方法 | 第48-51页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第48-49页 |
| 1.3 主要药物与试剂 | 第49页 |
| 1.4 中药“脊髓康”药液制备 | 第49页 |
| 1.5 0.3%强的松药液制备 | 第49页 |
| 1.6 动物分组及给药剂量 | 第49-50页 |
| 1.7 模型制备 | 第50页 |
| 1.8 标本采集 | 第50页 |
| 1.9 HE染色 | 第50页 |
| 1.10 透射电镜 | 第50-51页 |
| 2 结果 | 第51-55页 |
| 2.1 大鼠脊髓组织HE染色 | 第51-53页 |
| 2.2 大鼠脊髓组织透射电镜检测 | 第53-55页 |
| 3 小结 | 第55-56页 |
| 实验二 “脊髓康”对脊髓损伤大鼠细胞凋亡及生长相关蛋白的影响 | 第56-64页 |
| 1 材料与方法 | 第56-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第56页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第56页 |
| 1.3 主要药物与试剂 | 第56页 |
| 1.4 中药“脊髓康”药液制备 | 第56页 |
| 1.5 0.3%强的松药液制备 | 第56页 |
| 1.6 动物分组 | 第56页 |
| 1.7 模型制备 | 第56页 |
| 1.8 标本采集 | 第56-57页 |
| 1.9 脊髓损伤区细胞凋亡表达 | 第57页 |
| 1.10 脊髓损伤区生长相关蛋白表达 | 第57页 |
| 1.11 统计学处理 | 第57-58页 |
| 2 结果 | 第58-62页 |
| 2.1 各组大鼠脊髓组织细胞凋亡表达 | 第58-60页 |
| 2.2 各组大鼠脊髓组织生长相关蛋白表达 | 第60-62页 |
| 3 讨论 | 第62-64页 |
| 3.1 “脊髓康”对脊髓损伤大鼠细胞凋亡的影响 | 第62-63页 |
| 3.2 “脊髓康”对脊髓损伤大鼠生长相关蛋白的影响 | 第63-64页 |
| 4 结论 | 第64页 |
| 5 展望 | 第64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 第四部分 “脊髓康”调节Nogo-NgR信号通路的机制研究 | 第67-81页 |
| 1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 1.1 实验动物 | 第67页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第67页 |
| 1.3 主要药物与试剂 | 第67页 |
| 1.4 中药“脊髓康”药液制备 | 第67-68页 |
| 1.5 0.3%强的松药液制备 | 第68页 |
| 1.6 动物分组 | 第68页 |
| 1.7 模型制备 | 第68页 |
| 1.8 标本采集 | 第68页 |
| 1.9 免疫组化法观察脊髓组织Nogo-A、NgR的蛋白表达 | 第68页 |
| 1.10 Western blottingting检测脊髓组织Nogo-A、NgR的蛋白表达 | 第68页 |
| 1.11 荧光定量PCR法测定脊髓组织Nogo-A mRNA、NgR mRNA表达 | 第68页 |
| 1.12 统计学处理 | 第68页 |
| 2 结果 | 第68-77页 |
| 2.1 各组大鼠脊髓组织中Nogo-A蛋白的免疫组化表达 | 第69-71页 |
| 2.2 各组大鼠脊髓组织中NgR蛋白的免疫组化表达 | 第71-73页 |
| 2.3 各组大鼠脊髓组织中Nogo-A蛋白的Western blottingting表达 | 第73-75页 |
| 2.4 各组大鼠脊髓组织中NgR蛋白的Western blottingting表达 | 第75页 |
| 2.5 各组大鼠脊髓组织中Nogo-A mRNA表达 | 第75-76页 |
| 2.6 各组大鼠脊髓组织中NgR mRNA表达 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-78页 |
| 4 结论 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 第五部分 全文总结与展望 | 第81-83页 |
| 综述1 | 第83-90页 |
| 参考文献 | 第87-90页 |
| 综述2 | 第90-95页 |
| 参考文献 | 第93-95页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第95-96页 |
| 中英文缩略词表 | 第96-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 作者简介 | 第99页 |
