致谢 | 第6-7页 |
摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
目录 | 第10-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-27页 |
1 内生真菌研究概况 | 第13-16页 |
1.1 内生真菌的概念 | 第13页 |
1.2 内生真菌的分类 | 第13-14页 |
1.3 内生真菌的生物功能 | 第14-16页 |
1.3.1 增强寄主抗病虫害能力 | 第14-15页 |
1.3.2 促进寄主植物生长发育 | 第15页 |
1.3.3 促进寄主植物抗生物和非生物胁迫 | 第15-16页 |
2 暗色有隔真菌研究概况 | 第16-17页 |
2.1 暗色有隔真菌的概念 | 第16页 |
2.2 暗色有隔内生真菌的侵染结构和侵染模式 | 第16-17页 |
3 MAPK信号通路 | 第17-22页 |
3.1 植物病原真菌的MAPK信号通路组成 | 第17-18页 |
3.2 酿酒酵母中MAPK信号通路研究概况 | 第18-19页 |
3.3 稻瘟病菌中MAPK信号通路研究概况 | 第19-21页 |
3.4 其他植物病原真菌中MAPK信号转导途径研究概况 | 第21-22页 |
4 cAMP信号转导途径 | 第22-26页 |
4.1 植物病原真菌cAMP信号转导途径的组成 | 第22-23页 |
4.2 酿酒酵母中的cAMP-PKA信号转导途径研究概况 | 第23-24页 |
4.3 稻瘟病菌中的cAMP-PKA信号转导途径研究概况 | 第24-25页 |
4.4 其他植物病原真菌中的cAMP-PKA信号转导途径研究概况 | 第25-26页 |
5 本项研究目的意义 | 第26-27页 |
第二章 稻镰状瓶霉Pmk1基因的功能分析 | 第27-53页 |
2.1 材料与方法 | 第27-37页 |
2.1.1 试验菌株和培养、保存条件 | 第27-30页 |
2.1.2 常规分子生物学实验技术 | 第30-32页 |
2.1.3 敲除载体构建的方法 | 第32-33页 |
2.1.4 稻镰状瓶霉的T-DNA转化 | 第33-34页 |
2.1.5 稻镰状瓶霉DNA提取 | 第34-35页 |
2.1.6 突变体表型分析 | 第35-37页 |
2.1.7 Pmk1的保守结构域分析及进化树的构建 | 第37页 |
2.1.8 数据分析 | 第37页 |
2.2 结果分析 | 第37-51页 |
2.2.1 稻镰状瓶霉Pmk1的分析与敲除 | 第37-39页 |
2.2.2 △Pmk1突变体菌落形态和孢子产生 | 第39-40页 |
2.2.3 △Pmk1在疏水性表面的孢子萌发和附着胞形成 | 第40-42页 |
2.2.4 △Pmk1突变体致病性分析 | 第42-46页 |
2.2.5 双氧水H_2O_2敏感性测定 | 第46-48页 |
2.2.6 △Pmk1基因缺失对稻镰状瓶霉细胞壁完整性影响 | 第48-49页 |
2.2.7 Pmk1基因缺失对稻镰状瓶霉耐环境胁迫的影响 | 第49-51页 |
2.3 本章讨论 | 第51-53页 |
第三章 稻镰状瓶霉CpkA和MagA基因的功能分析 | 第53-69页 |
3.1 材料与方法 | 第53-54页 |
3.1.1 试验菌株和培养、保存条件 | 第53页 |
3.1.2 常规分子生物学实验技术 | 第53页 |
3.1.3 敲除载体构建的方法 | 第53页 |
3.1.4 稻镰状瓶霉的T-DNA转化 | 第53-54页 |
3.1.5 稻镰状瓶霉DNA提取 | 第54页 |
3.1.6 突变体表型分析 | 第54页 |
3.1.7 Cpka和MagA的保守结构域分析及进化树的构建 | 第54页 |
3.1.8 数据分析 | 第54页 |
3.2 结果分析 | 第54-67页 |
3.2.1 稻镰状瓶霉Cpka和MagA的分析与敲除 | 第54-57页 |
3.2.2 △Cpka突变体和△MagA突变体的菌落形态 | 第57-59页 |
3.2.3 △MagA在疏水性表面的孢子萌发 | 第59页 |
3.2.4 △Cpka和△MagA致病性分析 | 第59-62页 |
3.2.5 双氧水H_2O_2敏感性测定 | 第62-63页 |
3.2.6 Cpka或MagA基因缺失对稻镰状瓶霉细胞壁完整性影响 | 第63-65页 |
3.2.7 Cpka或MagA基因缺失对稻镰状瓶霉耐环境胁迫的影响 | 第65-67页 |
3.3 本章讨论 | 第67-69页 |
第四章 试验总结与展望 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-76页 |
附表1 | 第76-77页 |