| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-23页 |
| 研究现状、成果 | 第16-22页 |
| 研究目的、方法 | 第22-23页 |
| 一、大鼠脑皮质星形胶质细胞原代培养及鉴定 | 第23-42页 |
| 1.1 对象和方法 | 第23-29页 |
| 1.1.1 大鼠星型胶质细胞原代培养 | 第23-25页 |
| 1.1.2 星形胶质细胞GFAP免疫细胞化学染色 | 第25-27页 |
| 1.1.3 星形胶质细胞HE染色 | 第27页 |
| 1.1.4 形胶质细胞生长曲线测定 | 第27-29页 |
| 1.2 结果 | 第29-38页 |
| 1.2.1 原代培养星形胶质细胞镜下形态观察 | 第29页 |
| 1.2.2 星形胶质细胞GFAP免疫细胞化学染色 | 第29页 |
| 1.2.3 星形胶质细胞HE染色 | 第29页 |
| 1.2.4 星形胶质细胞生长曲线测定 | 第29-38页 |
| 1.3 讨论 | 第38-40页 |
| 1.3.1 取材动物年龄与部位 | 第38-39页 |
| 1.3.2 培养中出现的两种类型的星形胶质细胞 | 第39页 |
| 1.3.3 星形胶质细胞的纯化 | 第39-40页 |
| 1.4 小结 | 第40-42页 |
| 二、星形胶质细胞OGD/R损伤模型的建立 | 第42-61页 |
| 2.1 对象和方法 | 第42-51页 |
| 2.1.1 主要仪器及试剂 | 第42-43页 |
| 2.1.2 星形胶质细胞OGD | 第43页 |
| 2.1.3 星形胶质细胞OGD/R | 第43-44页 |
| 2.1.4 MTT比色法检测细胞活性 | 第44页 |
| 2.1.5 LDH漏出检测 | 第44-45页 |
| 2.1.6 细胞水肿的形态学观察 | 第45页 |
| 2.1.7 Western blotting检测AQP4蛋白表达 | 第45-49页 |
| 2.1.8 实验数据的处理与统计学分析 | 第49-51页 |
| 2.2 结果 | 第51-58页 |
| 2.2.1 OGD时间对星形胶质细胞的影响作用实验 | 第51页 |
| 2.2.2 OGD/R对星形胶质细胞AQP4表达及水肿的影响作用 | 第51-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-60页 |
| 2.3.1 细胞氧糖剥夺后再灌注时间点的选择 | 第58-59页 |
| 2.3.2 OGD/R过程细胞水肿的形成 | 第59页 |
| 2.3.3 OGD/R对星形胶质细胞AQP4的影响 | 第59页 |
| 2.3.4 OGD/R所致的细胞水肿与AQP4表达的关系 | 第59-60页 |
| 2.4 小结 | 第60-61页 |
| 三、孕酮对OGD/R损伤的AC细胞AQP4的影响及机制 | 第61-85页 |
| 3.1 对象和方法 | 第61-65页 |
| 3.1.1 主要仪器及试剂 | 第61页 |
| 3.1.2 细胞分组及处理因素 | 第61-62页 |
| 3.1.3 MTT法细胞活性检测 | 第62页 |
| 3.1.4 LDH漏出检测 | 第62页 |
| 3.1.5 细胞水肿的形态学观察 | 第62页 |
| 3.1.6 Western blotting检测AQP4、PKC的蛋白表达 | 第62-63页 |
| 3.1.7 免疫荧光表达检测 | 第63-64页 |
| 3.1.8 实验数据的处理与统计学分析 | 第64-65页 |
| 3.2 结果 | 第65-78页 |
| 3.2.1 不同剂量孕酮对OGD4/R24细胞的影响实验 | 第65页 |
| 3.2.2 孕酮对OGD4/R24细胞作用的信号转导机制实验 | 第65-78页 |
| 3.3 讨论 | 第78-83页 |
| 3.3.1 孕酮干预剂量的选择 | 第78-79页 |
| 3.3.2 孕酮通过调控AQP4缓解脑水肿 | 第79-80页 |
| 3.3.3 PKC在缺血再灌注后的变化 | 第80-81页 |
| 3.3.4 PKC对AQP4表达的调控 | 第81-82页 |
| 3.3.5 PKC介导的孕酮抑制AQP4表达的作用 | 第82页 |
| 3.3.6 孕酮的作用途径及其受体 | 第82-83页 |
| 3.4 小结 | 第83-85页 |
| 全文结论 | 第85-87页 |
| 论文创新点 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-96页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第96-97页 |
| 综述 | 第97-115页 |
| 综述参考文献 | 第107-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
