| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第15-30页 |
| 1.1 课题背景及研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 1.2 细胞力学测量方法的发展概况 | 第16-18页 |
| 1.2.1 微管吸吮技术 | 第17页 |
| 1.2.2 流动小室技术 | 第17-18页 |
| 1.2.3 基底应变加载技术 | 第18页 |
| 1.2.4 基于AFM的力检测技术 | 第18页 |
| 1.3 AFM的工作原理 | 第18-20页 |
| 1.4 基于AFM的细胞有丝分裂过程测量研究现状 | 第20-22页 |
| 1.5 基于AFM的细胞刚度测量研究现状 | 第22-24页 |
| 1.6 基于单细胞力谱技术的细胞粘附特性测量概述 | 第24-29页 |
| 1.6.1 细胞粘附特性测量技术概述 | 第24-26页 |
| 1.6.2 基于AFM的单细胞力谱技术发展概况 | 第26-29页 |
| 1.7 本文的主要研究内容 | 第29-30页 |
| 第2章 细胞力学特性AFM测量的方法和理论模型 | 第30-47页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 细胞有丝分裂的力学特性 | 第30-35页 |
| 2.2.1 动物细胞的有丝分裂 | 第30-31页 |
| 2.2.2 细胞有丝分裂力学特性的测量和计算 | 第31-32页 |
| 2.2.3 细胞有丝分裂力学特性测量模型的改进 | 第32-35页 |
| 2.3 细胞刚度的测量原理 | 第35-37页 |
| 2.4 AFM力成像模式的测量原理 | 第37-38页 |
| 2.5 细胞粘附特性分析 | 第38-41页 |
| 2.5.1 细胞表面的粘附分子 | 第38-39页 |
| 2.5.2 分子连接的形成与解离 | 第39-41页 |
| 2.6 基于AFM的细胞粘附特性测量 | 第41-44页 |
| 2.6.1 力-位移曲线的获取 | 第41-42页 |
| 2.6.2 细胞粘附力学作用的分子基础 | 第42-44页 |
| 2.7 基于AFM的赫兹接触模型 | 第44-45页 |
| 2.8 AFM悬臂梁探针的校准 | 第45-46页 |
| 2.9 本章小结 | 第46-47页 |
| 第3章 细胞有丝分裂力学特性和细胞刚度的定量研究 | 第47-69页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 楔形悬臂梁探针的制作与检测 | 第47-50页 |
| 3.2.1 楔形悬臂梁探针的制作 | 第47-49页 |
| 3.2.2 楔形悬臂梁探针表面形貌的检测 | 第49-50页 |
| 3.3 细胞平衡力和中截面面积的测量 | 第50-53页 |
| 3.3.1 实验仪器与实验样品制备 | 第50-51页 |
| 3.3.2 楔形探针弹性系数和灵敏度的校准 | 第51页 |
| 3.3.3 基于AFM的恒高实验 | 第51-53页 |
| 3.4 细胞有丝分裂的力学特性分析 | 第53-57页 |
| 3.4.1 细胞平衡力的测量结果 | 第53-54页 |
| 3.4.2 测量模型中圆心角对细胞内压强计算结果的影响 | 第54-56页 |
| 3.4.3 基于半圆模型的细胞体积计算 | 第56-57页 |
| 3.5 细胞骨架的免疫荧光染色观察 | 第57-60页 |
| 3.5.1 免疫荧光实验 | 第58-59页 |
| 3.5.2 细胞骨架的成像 | 第59-60页 |
| 3.6 细胞形貌和刚度的定量检测 | 第60-68页 |
| 3.6.1 多聚甲醛固定细胞形貌检测和弹性模量测量 | 第60-61页 |
| 3.6.2 力成像模式检测细胞形貌和刚度 | 第61-62页 |
| 3.6.3 针尖几何形状对细胞刚度的影响 | 第62-63页 |
| 3.6.4 液体流对细胞的剪切作用 | 第63-64页 |
| 3.6.5 细胞骨架重组对细胞形貌和刚度的影响 | 第64-68页 |
| 3.7 本章小结 | 第68-69页 |
| 第4章 细胞粘附力学作用分子基础的定量分析 | 第69-93页 |
| 4.1 引言 | 第69页 |
| 4.2 基于AFM的单细胞力谱实验 | 第69-71页 |
| 4.2.1 实验仪器与样品制备 | 第69-70页 |
| 4.2.2 单细胞力谱实验步骤 | 第70-71页 |
| 4.3 PDMS分区基底的制作与应用 | 第71-80页 |
| 4.3.1 PDMS分区基底的制作 | 第72-73页 |
| 4.3.2 PDMS分区基底的检验 | 第73-77页 |
| 4.3.3 PDMS分区基底在单细胞力谱实验中的应用 | 第77-80页 |
| 4.4 细胞与细胞表面粘附分子粘附特性的评价方法 | 第80-90页 |
| 4.4.1 细胞粘附力测量实验 | 第80-82页 |
| 4.4.2 加载速度对粘附分子连接断裂力的影响 | 第82-83页 |
| 4.4.3 接触时间对粘附分子连接断裂力的影响 | 第83-86页 |
| 4.4.4 实验参数对单细胞粘附力的影响 | 第86-90页 |
| 4.5 细胞膜纳米管的共聚焦显微镜成像及分析 | 第90-92页 |
| 4.6 本章小结 | 第92-93页 |
| 第5章 细胞粘附连接调节现象的定量研究 | 第93-116页 |
| 5.1 引言 | 第93页 |
| 5.2 细胞表面受体Eph酪氨酸激酶家族简介 | 第93-95页 |
| 5.3 Ephrin-A1对PC3细胞的调节作用 | 第95-100页 |
| 5.3.1 PC3细胞与ephrin-A1的粘附力 | 第95-96页 |
| 5.3.2 Ephrin-A1对PC3细胞的诱导作用 | 第96-98页 |
| 5.3.3 阴性对照蛋白的检验 | 第98-99页 |
| 5.3.4 PC3细胞对外基质蛋白的粘附连接调节 | 第99-100页 |
| 5.4 细胞与基底接触面积的测量 | 第100-102页 |
| 5.5 Ephrin-A1对不同细胞的力学调节作用 | 第102-105页 |
| 5.6 整合素在调节粘附连接中的力学作用 | 第105-107页 |
| 5.7 Ephrin-A1对PC3细胞表面整合素分布的影响 | 第107-108页 |
| 5.8 信号蛋白在细胞粘附连接中的力学作用 | 第108-111页 |
| 5.9 抑制剂浓度对细胞活性的影响 | 第111-113页 |
| 5.10 Ephrin-A1的物理状态对细胞粘附连接的调节 | 第113-115页 |
| 5.11 本章小结 | 第115-116页 |
| 结论 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-128页 |
| 对文中部分插图来源的特殊说明 | 第128-129页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及其它成果 | 第129-131页 |
| 致谢 | 第131-133页 |
| 个人简历 | 第133页 |
