摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第1章 引言 | 第9-16页 |
1.1 CaM的结构 | 第9-10页 |
1.2 CaM与靶蛋白的结合 | 第10-12页 |
1.3 CaM的细胞生物学功能 | 第12-14页 |
1.3.1 CaM调控细胞增殖及细胞周期 | 第12-13页 |
1.3.2 CaM参与调控激酶活性 | 第13页 |
1.3.3 CaM调节微管解聚 | 第13-14页 |
1.4 研究七鳃鳗中CaM的意义 | 第14-16页 |
第2章 日本七鳃鳗L-CaM分子克隆及生物信息学分析 | 第16-29页 |
2.1 材料 | 第16页 |
2.1.1 主要试剂 | 第16页 |
2.1.2 主要仪器 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-20页 |
2.2.1 七鳃鳗神经轴体获取 | 第16-17页 |
2.2.2 Total RNA的提取 | 第17页 |
2.2.3 神经轴体cDNA模板的制备 | 第17-18页 |
2.2.4 L-CaM全长基因扩增 | 第18-19页 |
2.2.5 目的片段的回收 | 第19页 |
2.2.6 目的片段与载体连接与转化 | 第19页 |
2.2.7 阳性菌落的PCR鉴定 | 第19-20页 |
2.2.8 重组质粒的提取与测序 | 第20页 |
2.3 结果 | 第20-27页 |
2.3.1 神经轴体总RNA提取 | 第20-21页 |
2.3.2 七鳃鳗L-CaM基因全长扩增 | 第21-22页 |
2.3.3 一级结构分析 | 第22-25页 |
2.3.4 L-CaM功能结构域预测 | 第25页 |
2.3.5 二级结构分析 | 第25-26页 |
2.3.6 三级结构分析 | 第26页 |
2.3.7 同源序列比对及进化树分析 | 第26-27页 |
2.4 讨论 | 第27-29页 |
第3章 七鳃鳗L-CaM原核表达、蛋白纯化及鉴定 | 第29-38页 |
3.1 材料 | 第29页 |
3.1.1 主要试剂 | 第29页 |
3.1.2 主要仪器 | 第29页 |
3.2 方法 | 第29-32页 |
3.2.1 L-CaM ORF区引物设计 | 第29-30页 |
3.2.2 基因扩增 | 第30页 |
3.2.3 目的片段的回收 | 第30页 |
3.2.4 目的片段与载体连接与转化 | 第30-31页 |
3.2.5 原核蛋白诱导表达及可溶性鉴定 | 第31页 |
3.2.6 原核重组蛋白纯化 | 第31-32页 |
3.2.7 原核重组蛋白浓度测定 | 第32页 |
3.2.8 L-CaM重组蛋白质谱鉴定 | 第32页 |
3.2.9 圆二色谱分析L-CaM二级结构 | 第32页 |
3.3 结果 | 第32-36页 |
3.3.1 pCold Ⅰ-L-CaM重组载体构建及测序 | 第32-34页 |
3.3.2 pCold Ⅰ-L-CaM重组蛋白的诱导表达和纯化 | 第34-35页 |
3.3.3 L-CaM重组蛋白质谱鉴定 | 第35-36页 |
3.3.4 圆二色谱分析L-CaM二级结构 | 第36页 |
3.4 讨论 | 第36-38页 |
第4章L-CaM真核表达载体的构建及免疫相关研究 | 第38-49页 |
4.1 材料 | 第38页 |
4.1.1 主要试剂 | 第38页 |
4.1.2 主要仪器 | 第38页 |
4.2 方法 | 第38-43页 |
4.2.1 真核引物设计 | 第38-39页 |
4.2.2 基因扩增 | 第39页 |
4.2.3 目的片段与载体连接与转化 | 第39-40页 |
4.2.4 细胞培养 | 第40页 |
4.2.5 激光共聚焦显微镜检测分析 | 第40页 |
4.2.6 过表达的L-CaM对下游激酶CaMKⅡ和PLA2的影响 | 第40-42页 |
4.2.7 免疫组织化学检测分析 | 第42-43页 |
4.3 结果 | 第43-47页 |
4.3.1 pEGFP-N1-CaM真核载体的构建 | 第43-44页 |
4.3.2 L-CaM在细胞中的定位分析 | 第44-45页 |
4.3.3 L-CaM过表达对下游激酶的影响 | 第45-46页 |
4.3.4 七鳃鳗组织中L-CaM的分布表达 | 第46-47页 |
4.4 讨论 | 第47-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
附录A 质粒酶切实验方法 | 第53-54页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |