| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 转录因子的概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 转录因子的结构 | 第10-11页 |
| 1.1.2 转录因子的调控 | 第11-12页 |
| 1.2 植物细胞中非生物胁迫相关的几种转录因子 | 第12-15页 |
| 1.2.1 DREB转录因子 | 第12-13页 |
| 1.2.2 MYB转录因子 | 第13-14页 |
| 1.2.3 bZIP转录因子 | 第14-15页 |
| 1.3 NAC类转录因子 | 第15-20页 |
| 1.3.1 NAC类转录因子的发现及命名 | 第15页 |
| 1.3.2 NAC类转录因子基本特征 | 第15-16页 |
| 1.3.3 NAC转录因子的调控 | 第16-17页 |
| 1.3.4 NAC转录因子的功能 | 第17-20页 |
| 1.4 蜡梅的研究进展 | 第20-24页 |
| 1.4.1 蜡梅属植物的种类与分布 | 第20页 |
| 1.4.2 蜡梅的品种分类 | 第20-21页 |
| 1.4.3 蜡梅的分子生物学研究 | 第21-22页 |
| 1.4.4 蜡梅的应用研究 | 第22-24页 |
| 第2章 引言 | 第24-26页 |
| 2.1 本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 2.2 本研究的技术路线 | 第25-26页 |
| 第3章 蜡梅CPNAC8基因的克隆和分子特征分析 | 第26-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 3.1.2 菌株与载体 | 第26页 |
| 3.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第26页 |
| 3.1.4 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 3.1.5 自配的主要试剂 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-34页 |
| 3.2.1 蜡梅叶片RNA的提取 | 第27-28页 |
| 3.2.2 蜡梅cDNA第一链的合成 | 第28-29页 |
| 3.2.3 CpNAC8基因 3'RACE模板合成 | 第29-30页 |
| 3.2.4 利用 3′RACE克隆CpNAC8基因 3′端cDNA序列 | 第30-34页 |
| 3.2.5 CpNAC8基因cDNA的生物信息学分析 | 第34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-40页 |
| 3.3.1 蜡梅基因组总RNA的检测 | 第34-35页 |
| 3.3.2 蜡梅CpNAC8基因全长cDNA的获得及其序列特征 | 第35-37页 |
| 3.3.3 蜡梅CpNAC8基因编码蛋白同源性比对与进化树分析 | 第37-39页 |
| 3.3.4 蜡梅CpNAC8基因编码蛋白的基本特征预测分析 | 第39-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第4章 蜡梅CpNAC8基因的表达特性分析 | 第42-52页 |
| 4.1 实验材料 | 第42页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第42页 |
| 4.1.2 主要试剂及试剂盒 | 第42页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 蜡梅不同组织、不同时期及不同胁迫处理材料的采集 | 第42-43页 |
| 4.2.2 蜡梅总RNA的提取及cDNA第一链的合成 | 第43页 |
| 4.2.3 CpNAC8基因表达特性的实时荧光定量分析 | 第43-44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-50页 |
| 4.3.1 蜡梅总RNA提取 | 第44页 |
| 4.3.2 CpNAC8基因的表达特性分析 | 第44-50页 |
| 4.4 讨论 | 第50-52页 |
| 第5章 蜡梅CpNAC8转录激活作用分析及转录激活活力测定 | 第52-62页 |
| 5.1 实验材料 | 第52页 |
| 5.1.1 菌株与载体 | 第52页 |
| 5.1.2 主要试剂及试剂盒 | 第52页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第52页 |
| 5.1.4 自配的主要试剂 | 第52页 |
| 5.2 实验方法 | 第52-57页 |
| 5.2.1 酵母表达载体的构建 | 第52-55页 |
| 5.2.2 表达载体转化酵母感受态细胞 | 第55-56页 |
| 5.2.3 转录激活活力测定 | 第56-57页 |
| 5.3 结果与分析 | 第57-60页 |
| 5.3.1 酵母表达载体的构建 | 第57-59页 |
| 5.3.2 CpNAC8的转录激活作用 | 第59-60页 |
| 5.4 讨论 | 第60-62页 |
| 第6章 蜡梅CpNAC8基因表达载体的构建及拟南芥表型研究 | 第62-82页 |
| 6.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第62页 |
| 6.1.2 载体及菌株 | 第62页 |
| 6.1.3 试剂盒及主要试剂 | 第62页 |
| 6.1.4 主要仪器设备 | 第62页 |
| 6.1.5 自配的主要试剂 | 第62-63页 |
| 6.2 实验方法 | 第63-69页 |
| 6.2.1 蜡梅CpNAC8基因植物超表达载体的构建 | 第63-65页 |
| 6.2.2 转化拟南芥 | 第65-66页 |
| 6.2.3 转基因拟南芥的检测 | 第66-67页 |
| 6.2.4 转基因拟南芥的功能分析 | 第67-69页 |
| 6.3 结果与分析 | 第69-80页 |
| 6.3.1 植物表达载体的构建 | 第69-70页 |
| 6.3.2 转基因拟南芥的筛选 | 第70-73页 |
| 6.3.3 转基因拟南芥的表型观察 | 第73-75页 |
| 6.3.4 转CpNAC8基因对拟南芥抗逆性的影响 | 第75-80页 |
| 6.4 讨论 | 第80-82页 |
| 第7章 总结 | 第82-84页 |
| 7.1 主要结果 | 第82-83页 |
| 7.1.1 CpNAC8分子克隆及其特征 | 第82页 |
| 7.1.2 CpNAC8基因在蜡梅中的表达特征分析 | 第82页 |
| 7.1.3 CpNAC8基因转录激活特性验证 | 第82-83页 |
| 7.1.4 CpNAC8基因转拟南芥的表型研究 | 第83页 |
| 7.2 下一步计划 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-98页 |
| 缩略词表 | 第98-100页 |
| 致谢 | 第100-102页 |
| 在校期间发表论文和参与项目 | 第102页 |
