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典型拟除虫菊酯杀虫剂和典型重金属对斑马鱼的联合毒性研究

摘要第11-14页
Abstract第14-16页
1. 绪论第17-42页
    1.1 前言第17-18页
    1.2 拟除虫菊酯农药第18-30页
        1.2.1 拟除虫菊酯农药的发展与现状第19-20页
        1.2.2 拟除虫菊酯农药的分类及作用机制第20-22页
        1.2.3 拟除虫菊酯农药在水体环境的残留第22页
        1.2.4 拟除虫菊酯农药的水生毒性与生物代谢第22-26页
            1.2.4.1 急性毒性第23页
            1.2.4.2 行为干扰作用第23-24页
            1.2.4.3 生殖发育毒性第24页
            1.2.4.4 内分泌干扰毒性第24-25页
            1.2.4.5 免疫毒性第25-26页
            1.2.4.6 生物代谢第26页
        1.2.5 拟除虫菊酯农药的手性特征第26-27页
        1.2.6 手性拟除虫菊酯农药毒性的对映体选择性第27-30页
            1.2.6.1 急性毒性的对映体选择性第27-28页
            1.2.6.2 内分泌干扰毒性的对映体选择性第28页
            1.2.6.3 发育毒性的对映体选择性第28-29页
            1.2.6.4 细胞毒性的对映体选择性第29页
            1.2.6.5 生物转化与代谢的对映体选择性第29-30页
    1.3 重金属污染第30-33页
        1.3.1 水体重金属污染情况第30-31页
        1.3.2 常见重金属的水生生态毒理效应第31-33页
            1.3.2.1 生物体内富集第31页
            1.3.2.2 早期发育毒性第31-32页
            1.3.2.3 免疫毒性第32页
            1.3.2.4 遗传毒性和致癌性第32-33页
            1.3.2.5 生理生化指标影响第33页
            1.3.2.6 内分泌干扰毒性第33页
    1.4 水体环境复合污染第33-37页
        1.4.1 复合污染概念及类型第33-34页
        1.4.2 水体复合污染现状与生态毒理效应第34-37页
            1.4.2.1 重金属复合污染第34-35页
            1.4.2.2 重金属与有机物复合污染第35-36页
            1.4.2.3 有机复合污染第36-37页
    1.5 斑马鱼及其在毒理学中的应用第37-40页
        1.5.1 斑马鱼的特点第37页
        1.5.2 斑马鱼在环境毒理学研究中的应用第37-40页
            1.5.2.1 重金属毒性评价第37-38页
            1.5.2.2 内分泌干扰物毒性评价第38-39页
            1.5.2.3 有机污染物毒性评价第39页
            1.5.2.4 污染物生物转化和代谢评价第39-40页
    1.6 本论文研究目的和意义第40-42页
        1.6.1 研究目的和意义第40页
        1.6.2 研究内容第40-42页
2. 氯菊酯和氯氰菊酯在亚致死浓度下对斑马鱼早期胚胎发育的联合毒性第42-70页
    2.1 前言第42-43页
    2.2 材料与方法第43-51页
        2.2.1 化合物与试剂第43页
        2.2.2 主要实验仪器及设备第43-44页
        2.2.3 斑马鱼培养及鱼卵收集第44页
        2.2.4 暴露实验设计第44-45页
        2.2.5 实际暴露浓度分析第45-46页
            2.2.5.1 水样前处理第45-46页
            2.2.5.2 气相色谱分析条件第46页
        2.2.6 形态学畸形和神经行为毒性分析第46页
        2.2.7 MS-222处理第46-47页
        2.2.8 基因表达检测第47-50页
            2.2.8.1 胚胎总RNA提取第47-48页
            2.2.8.2 反转录第48页
            2.2.8.3 实时定量PCR(Real-time PCR)第48-50页
        2.2.9 超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)活性测定第50-51页
            2.2.9.1 样品收集第50页
            2.2.9.2 样品蛋白含量测定第50页
            2.2.9.3 SOD的活性测定第50-51页
            2.2.9.4 CAT的活性测定第51页
        2.2.10 数据处理与分析第51页
    2.3 实验结果第51-64页
        2.3.1 实际暴露浓度化学分析第51-52页
        2.3.2 单个农药毒性第52-56页
        2.3.3 PM和CP对斑马鱼胚胎联合毒性第56-59页
        2.3.4 MS-222处理对毒性的减缓作用第59-61页
        2.3.5 神经元发育相关基因表达第61-63页
        2.3.6 抗氧化酶活性第63-64页
    2.4 讨论第64-68页
    2.5 小结与创新第68-70页
3. 镉增强了氯氰菊酯对斑马鱼的毒性作用第70-99页
    3.1 前言第70-71页
    3.2 材料与方法第71-79页
        3.2.1 化合物与试剂第71页
        3.2.2 主要实验仪器及设备第71-72页
        3.2.3 斑马鱼饲养及鱼卵收集第72页
        3.2.4 暴露实验设计第72-74页
        3.2.5 基因表达检测第74-75页
        3.2.6 抗氧化酶活性及丙二醛(MDA)含量第75-76页
        3.2.7 EROD酶活性的测定第76-77页
            3.2.7.1 斑马鱼仔鱼(144 hpf)体内EROD酶活性测定第76页
            3.2.7.2 成鱼肝脏内EROD酶活性测定第76-77页
        3.2.8 大鼠CYP1A1对CP的体外代谢第77页
        3.2.9 水溶液中和斑马鱼体内CP浓度测定第77-79页
            3.2.9.1 水溶液中CP浓度测定第77-78页
            3.2.9.2 鱼体内CP浓度测定第78页
            3.2.9.3 GC-ECD色谱条件第78-79页
        3.2.10 暴露溶液中和斑马鱼体内Cd浓度测定第79页
            3.2.10.1 暴露溶液中Cd浓度测定第79页
            3.2.10.2 斑马鱼体内Cd浓度测定第79页
        3.2.11 数据处理与分析第79页
    3.3 实验结果第79-94页
        3.3.1 单个物质毒性作用第79-82页
        3.3.2 CP和Cd对斑马鱼胚胎和成鱼的联合毒性作用第82-84页
            3.3.2.1 CP和Cd的对斑马鱼胚胎的联合毒性作用第82-84页
            3.3.2.2 CP和Cd的对成年斑马鱼的联合毒性作用第84页
        3.3.3 CP和Cd对斑马鱼胚胎氧化应激反应的联合作用第84-88页
            3.3.3.1 对抗氧化酶活性及脂质过氧化产物含量的联合作用第84-86页
            3.3.3.2 对抗氧化酶基因表达水平的联合作用第86-88页
        3.3.4 CP和Cd对斑马鱼胚胎和成鱼体内CYP基因表达联合作用第88-90页
            3.3.4.1 对斑马鱼胚胎体内CYP酶基因表达的联合作用第88页
            3.3.4.2 对成年斑马鱼体内CYP酶基因表达的联合作用第88-90页
        3.3.5 CP和Cd联合暴露对EROD活性的影响第90-92页
        3.3.6 Cd对大鼠CYP1A1体外代谢CP的干扰作用第92-93页
        3.3.7 鱼体内CP和Cd的残留第93-94页
    3.4 讨论第94-98页
    3.5 小结与创新第98-99页
4. 重金属镉、铜、铅干扰斑马鱼体内联苯菊酯的对映体转化第99-121页
    4.1 前言第99-100页
    4.2 材料与方法第100-105页
        4.2.1 化合物与试剂第100页
        4.2.2 主要实验仪器及设备第100-101页
        4.2.3 斑马鱼饲养第101页
        4.2.4 联苯菊酯对映体制备第101-102页
        4.2.5 暴露实验设计第102页
        4.2.6 基因表达检测第102-104页
        4.2.7 暴露溶液中BF浓度测定第104页
        4.2.8 鱼体内BF浓度测定第104页
        4.2.9 UPLC-ESI-MS/MS色谱方法第104-105页
        4.2.10 数据处理与分析第105页
    4.3 实验结果第105-116页
        4.3.1 联苯菊酯对映体拆分与构型鉴定第105-106页
        4.3.2 联苯菊酯和Cd、Cu、Pb对斑马鱼的联合毒性第106-108页
        4.3.3 单独暴露于rac-cis-BF、S/R-cis-BF斑马鱼体内EF值变化第108-109页
        4.3.4 重金属对斑马鱼体内rac-cis-BF对映体选择性生物转化的影响第109-110页
        4.3.5 重金属对斑马鱼体内S-cis-BF对映体选择性生物转化的影响第110页
        4.3.6 重金属对斑马鱼体内R-cis-BF对映体选择性生物转化的影响第110-111页
        4.3.7 暴露溶液中EF值变化第111-112页
        4.3.8 CYP酶基因表达的对映体选择性第112-115页
        4.3.9 联苯菊酯对映体色谱图第115-116页
    4.4 讨论第116-119页
    4.5 小结与创新第119-121页
5. 研究结论与未来工作展望第121-123页
    5.1 研究结论第121页
    5.2 未来工作展望第121-123页
参考文献第123-141页
攻读博士学位期间发表的论文第141-143页
致谢第143-144页

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