| 缩略词 | 第1-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-26页 |
| 1 植物种质资源保存研究进展 | 第16-18页 |
| ·植物种质资源离体保存研究进展 | 第16-18页 |
| 2 植物遗传多样性的 DNA 分子标记技术 | 第18-19页 |
| ·RFLP（Restriction Fragment Length Polymorphism，限制性片段长度多态性） | 第18页 |
| ·RAPD（Random Amplified Polymorphie DNA，DNA 随机扩增多态性） | 第18页 |
| ·ISSR（Inter-Simple Sequence Repeats，简单序列重复区间） | 第18-19页 |
| ·AFLP 技术（Amplified Fragment Length Polymorplism, 扩增片段长度多态性） | 第19页 |
| ·SSR（Simple Sequence Repeats，简单重复序列） | 第19页 |
| 3 植物 SOD 的生理作用及其基因克隆 | 第19-21页 |
| ·SOD 的种类及生理作用 | 第19-20页 |
| ·植物体内活性氧（ROS）的产生及其清除 | 第20页 |
| ·植物SOD 基因的克隆 | 第20页 |
| ·植物基因同源序列克隆 | 第20-21页 |
| 4 香蕉种质资源及生物技术研究进展 | 第21-23页 |
| ·野生蕉概述 | 第21页 |
| ·野生蕉的生态环境 | 第21页 |
| ·野生蕉的主要特征 | 第21页 |
| ·香蕉遗传多样性 DNA 分子标记研究进展 | 第21-22页 |
| ·香蕉离体再生体系的建立及种质资源保存研究进展 | 第22-23页 |
| ·香蕉离体再生体系的建立 | 第22页 |
| ·香蕉种质资源保存研究进展 | 第22-23页 |
| ·香蕉相关功能基因的克隆 | 第23页 |
| 5 福建野生蕉种质资源研究概况 | 第23-24页 |
| 6 本研究的意义及主要内容 | 第24-26页 |
| ·研究意义 | 第24页 |
| ·研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 福建野生蕉种质资源的 RAPD 分析 | 第26-45页 |
| 第一节 福建7 份野生蕉遗传多样性RAPD 分析 | 第26-33页 |
| 1 材料与方法 | 第26-29页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·福建省各地野生香蕉种质资源的RAPD 分析 | 第26-27页 |
| ·主要试验设备及试验试剂 | 第27页 |
| ·主要试验设备 | 第27页 |
| ·主要试验试剂 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-29页 |
| ·野生蕉基因组DNA 的提取 | 第27-28页 |
| ·野生蕉基因组 DNA 的检测 | 第28页 |
| ·野生蕉基因组DNA 扩增反应 | 第28页 |
| ·数据分析方法 | 第28-29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-32页 |
| ·野生蕉基因组DNA 的检测 | 第29页 |
| ·福建各地7 份野生蕉混合样样品的RAPD 分析 | 第29-32页 |
| 3. 讨论 | 第32-33页 |
| 第二节 福建野生蕉群体遗传多样性的RAPD 分析 | 第33-45页 |
| 1 材料与方法 | 第33页 |
| ·材料 | 第33页 |
| ·主要试验设备及试验试剂 | 第33页 |
| ·方法 | 第33页 |
| 2. 结果与分析 | 第33-43页 |
| ·野生蕉基因组DNA 的检测 | 第33-36页 |
| ·福建野生蕉种质资源的RAPD 分析 | 第36-40页 |
| ·3 个居群群体遗传结构分析 | 第40-43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| 第三章 福建野生蕉资源离体再生体系建立与离体保存研究 | 第45-54页 |
| 第一节 福建野生蕉资源离体再生体系建立 | 第45-52页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-47页 |
| ·外植体类型及取材时期的选择 | 第46页 |
| ·吸芽诱导培养基的筛选 | 第46页 |
| ·不同添加物对香蕉外植体褐变的影响 | 第46-47页 |
| ·试管苗增殖培养 | 第47页 |
| ·培养条件 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-50页 |
| ·香蕉外植体取材时期的最佳选择 | 第47-48页 |
| ·吸芽外植体的诱导 | 第48页 |
| ·防止香蕉褐变附加物的选择 | 第48-49页 |
| ·野生蕉试管苗的增殖 | 第49-50页 |
| ·不同激素配比对野生蕉试管苗增殖的影响 | 第49-50页 |
| ·薄片培养与普通增殖培养对野生蕉试管苗增殖的影响 | 第50页 |
| ·野生蕉种子萌发试验 | 第50页 |
| ·野生蕉离体培养过程中多芽体的诱导 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| ·外植体的选取 | 第50-51页 |
| ·细胞分裂素对外植体褐变及增殖的影响 | 第51页 |
| ·培养基的选择 | 第51-52页 |
| 第二节 福建野生蕉资源离体保存研究 | 第52-54页 |
| 1 材料与方法 | 第52页 |
| ·材料 | 第52页 |
| ·方法 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| 第四章 福建野生香蕉离体保存相关基因 SOD 的克隆 | 第54-81页 |
| 第一节 野生蕉试管苗Mn-SOD 基因的克隆 | 第54-72页 |
| 1 材料与方法 | 第54-62页 |
| ·材料 | 第54-55页 |
| ·供试材料 | 第54页 |
| ·供试菌种 | 第54页 |
| ·仪器与试剂 | 第54-55页 |
| ·方法 | 第55-62页 |
| ·野生蕉叶片总RNA 提取与检测 | 第55-56页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因cDNA 保守区的克隆 | 第56-58页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因cDNA 的3′RACE 扩增 | 第58-59页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因cDNA 的5′RACE 扩增 | 第59-61页 |
| ·序列拼接 | 第61-62页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因开放阅读框（ORF）的克隆 | 第62页 |
| ·全长序列分析 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-70页 |
| ·野生蕉试管苗总RNA 的提取与质量检测 | 第62-63页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因保守区的克隆 | 第63-64页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因cDNA 的3′RACE 克隆结果 | 第64-66页 |
| ·野生蕉试管苗 Mn-SOD 基因 5′RACE 克隆结果分析 | 第66-67页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因全长序列拼接 | 第67-68页 |
| ·野生蕉试管苗 Mn-SOD 全长序列分析 | 第68-69页 |
| ·野生蕉试管苗Mn-SOD 基因ORF 扩增结果 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-72页 |
| ·克隆Mn-SOD 基因的意义 | 第70-71页 |
| ·SOD 研究中存在问题 | 第71-72页 |
| 第二节 野生蕉试管苗Mn-SOD 基因生物信息学分析 | 第72-81页 |
| 1 材料与方法 | 第72-73页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·方法 | 第72-73页 |
| 2 结果与分析 | 第73-80页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 理化性质预测与分析 | 第73-74页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 蛋白的亲疏水特性进行预测及分析 | 第74页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 亚细胞定位预测与分析 | 第74-75页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 蛋白的跨膜结构预测与分析 | 第75-76页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 信号肽的预测和分析 | 第76-77页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 与同源蛋白质家族比较分析 | 第77页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 磷酸化位点预测与分析 | 第77-78页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 蛋白质二级结构预测 | 第78页 |
| ·野生蕉Mn-SOD 三维结构的预测和分析 | 第78-80页 |
| 3 讨论 | 第80-81页 |
| 第五章 小结 | 第81-84页 |
| 1 福建野生蕉的遗传多样性 | 第81-82页 |
| 2 福建野生蕉种质资源离体再生体系的建立及离体保存研究 | 第82-83页 |
| 3 福州野生蕉 Mn-SOD 基因的克隆及生物信息学分析 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-95页 |
| 附录：图版及图版说明 | 第95-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
