| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-20页 |
| 1.1 几丁质、壳聚糖的研究概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 几丁质、壳聚糖 | 第10-11页 |
| 1.1.2 壳聚糖的制备 | 第11-12页 |
| 1.1.3 壳聚糖的功能特性 | 第12页 |
| 1.1.4 壳聚糖的应用 | 第12-13页 |
| 1.2 几丁质脱乙酰酶(CDA)的研究概述 | 第13-17页 |
| 1.2.1 CDA的来源 | 第14页 |
| 1.2.2 CDA的分离纯化 | 第14-15页 |
| 1.2.3 CDA的理化性质 | 第15-16页 |
| 1.2.4 CDA的分子学研究现状 | 第16-17页 |
| 1.2.5 CDA的酶促反应机理 | 第17页 |
| 1.3 几丁质脱乙酰酶(CDA)酶活的测定方法 | 第17-18页 |
| 1.4 壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第18页 |
| 1.5 论文研究的内容、目的及意义 | 第18-20页 |
| 1.5.1 本文研究的主要内容 | 第18-19页 |
| 1.5.2 本文研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1 菌种及原料 | 第20页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第20-24页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.2.3 培养基的选择 | 第22-24页 |
| 2.3 实验的技术路线 | 第24-25页 |
| 2.4 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.4.1 菌种筛选的方法 | 第25页 |
| 2.4.2 几丁质脱乙酰酶(CDA)酶活及菌体生物量测定方法 | 第25-26页 |
| 2.4.3 菌种的鉴定 | 第26-27页 |
| 2.4.4 菌株产几丁质脱乙酰酶(CDA)的发酵条件优化 | 第27-29页 |
| 2.4.5 几丁质脱乙酰酶(CDA)的分离纯化 | 第29-31页 |
| 2.4.6 几丁质脱乙酰酶(CDA)的酶学性质研究 | 第31-32页 |
| 2.5 数据统计 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-54页 |
| 3.1 菌种的筛选与鉴定 | 第33-35页 |
| 3.1.1 菌落特征 | 第33页 |
| 3.1.2 菌株的形态特征 | 第33-34页 |
| 3.1.3 菌种的分子生物学鉴定 | 第34-35页 |
| 3.2 菌株产几丁质脱乙酰酶(CDA)发酵条件的优化 | 第35-46页 |
| 3.2.1 发酵培养基对产酶的影响 | 第35-41页 |
| 3.2.2 培养条件对酶产量的影响 | 第41-45页 |
| 3.2.3 产酶条件优化后的发酵情况 | 第45-46页 |
| 3.3 几丁质脱乙酰酶(CDA)的分离纯化 | 第46-49页 |
| 3.3.1 DEAE-纤维素离子交换层析 | 第46-47页 |
| 3.3.2 Sephadex G-100凝胶层析 | 第47页 |
| 3.3.3 纯化结果分析 | 第47-48页 |
| 3.3.4 CDA的SDS-PAGE检测 | 第48-49页 |
| 3.4 几丁质脱乙酰酶(CDA)的酶学性质研究 | 第49-54页 |
| 3.4.1 pH对CDA酶活性的影响 | 第49页 |
| 3.4.2 温度对CDA酶活性的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.3 金属离子对酶活性的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.4 CDA的脱乙酰效果 | 第51-54页 |
| 4 问题与讨论 | 第54-56页 |
| 4.1 产CDA菌株的筛选原理 | 第54页 |
| 4.2 菌株产CDA的发酵条件优化 | 第54页 |
| 4.3 CDA的分离纯化 | 第54-55页 |
| 4.4 CDA的酶学性质研究 | 第55-56页 |
| 5 结论 | 第56-58页 |
| 5.1 菌株产CDA的最佳发酵条件 | 第56页 |
| 5.2 CDA的分离纯化 | 第56页 |
| 5.3 CDA的酶学性质 | 第56-57页 |
| 5.4 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 附录 | 第62-63页 |
| 本论文的特色及创新之处 | 第62页 |
| 文章发表情况 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
