| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩略词表(Abbreviation) | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-30页 |
| 1. 次氯酸 | 第16-21页 |
| 1.1 活性氧 | 第16页 |
| 1.2 细胞中的次氯酸来源 | 第16-17页 |
| 1.3 次氯酸在细胞中的修饰作用 | 第17-19页 |
| 1.4 次氯酸与疾病 | 第19-20页 |
| 1.5 次氯酸检测 | 第20-21页 |
| 2. 化学遗传学 | 第21-22页 |
| 3. 肺癌与A549细胞 | 第22-23页 |
| 4. 细胞凋亡 | 第23-26页 |
| 4.1 细胞凋亡概述 | 第23页 |
| 4.2 细胞凋亡调节相关因子 | 第23-24页 |
| 4.3 凋亡信号通路 | 第24-26页 |
| 5. 次氯酸与细胞凋亡 | 第26-27页 |
| 6. Keap1/Nrf2/ARE信号通路与凋亡调节 | 第27-30页 |
| 实验材料与方法 | 第30-48页 |
| 1. 实验材料 | 第30-38页 |
| 1.1实验所用细胞类型 | 第30页 |
| 1.2 试剂及耗材 | 第30-31页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第31-33页 |
| 1.4 主要溶液及试剂配方 | 第33-38页 |
| 2. 实验方法 | 第38-48页 |
| 2.1 HUVEC的提取及培养 | 第38-39页 |
| 2.2 RAW264.7细胞培养 | 第39-40页 |
| 2.3 A549细胞的传代与培养 | 第40-41页 |
| 2.4 磺酰罗丹明B比色法(SRB)实验 | 第41页 |
| 2.5 Hoechst 33258染色(死细胞染色) | 第41-42页 |
| 2.6 吖啶橙染色检测细胞核断裂 | 第42页 |
| 2.7 LDH检测细胞坏死 | 第42-43页 |
| 2.8 Western blot | 第43-44页 |
| 2.9 CAM肿瘤模型的建立 | 第44-45页 |
| 2.10 CAM血管实验 | 第45页 |
| 2.11 CAM肿瘤组织冰冻切片 | 第45-46页 |
| 2.12 TUNEL检测细胞凋亡 | 第46页 |
| 2.13 Nrf2活性检测 | 第46-48页 |
| 实验结果 | 第48-62页 |
| 1. 新型次氯酸荧光探针的合成 | 第48-52页 |
| 1.1 六种新型次氯酸荧光探针活细胞成像 | 第49-50页 |
| 1.2 探针CAN不与线粒体或溶酶体共定位 | 第50-51页 |
| 1.3 探针对RAW264.7细胞存活率的影响 | 第51-52页 |
| 2. 探针CAN对A549细胞的作用 | 第52-57页 |
| 2.1 CAN引起A549细胞形态变化 | 第52页 |
| 2.2 CAN能够抑制A549细胞生长 | 第52-54页 |
| 2.3 CAN对血管内皮细胞存活率的作用 | 第54-55页 |
| 2.4 CAN不诱导A549细胞坏死 | 第55页 |
| 2.5 CAN诱导A549细胞凋亡 | 第55-57页 |
| 3. CAN抑制肿瘤生长 | 第57-60页 |
| 4. CAN降低A549细胞内次氯酸水平 | 第60页 |
| 5. CAN提高Nrf2酶活性 | 第60-62页 |
| 讨论 | 第62-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第74-75页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第75页 |