摘要 | 第10-13页 |
ABSTRACT | 第13-15页 |
第一章 文献综述 | 第17-45页 |
1.1 植物水通道蛋白功能的研究进展 | 第17-22页 |
1.1.1 水通道蛋白(AQP)的分类 | 第17-18页 |
1.1.2 植物水通道蛋白的功能 | 第18-20页 |
1.1.3 植物水通道蛋白PIPs的水分传输功能 | 第20-21页 |
1.1.4 植物水通道蛋白PIPs的CO_2传输功能 | 第21页 |
1.1.5 植物水通道蛋白和光合作用的关系 | 第21-22页 |
1.2 植物根系的水分吸收模型 | 第22-23页 |
1.3 不同氮素形态对水稻抗旱性的影响 | 第23-26页 |
1.3.1 不同氮素形态对植物生长的影响 | 第23-24页 |
1.3.2 不同氮素形态对水分吸收的影响 | 第24-26页 |
1.3.3 不同氮素形态对水稻抗旱性研究进展 | 第26页 |
1.4 不同氮素浓度供应对水稻生长的影响 | 第26-28页 |
1.4.1 高氮促进水稻生长 | 第27页 |
1.4.2 氮素浓度和光合速率的关系 | 第27-28页 |
1.4.3 高氮条件下以氮固碳效率降低 | 第28页 |
1.5 研究意义 | 第28-30页 |
1.5.1 AQP介导调节不同氮素形态对水稻抗旱性的影响 | 第28-29页 |
1.5.2 AQP介导调节高氮条件下以氮固碳效率降低的机制 | 第29-30页 |
1.6 研究思路 | 第30-33页 |
1.6.1 研究目标 | 第30页 |
1.6.2 研究思路 | 第30-31页 |
1.6.3 研究内容 | 第31-32页 |
1.6.4 技术路线 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-45页 |
第二章 水稻水通道蛋白(OsPIPs)在异源表达系统中水分传输功能分析 | 第45-57页 |
2.1 引言 | 第46-47页 |
2.2 材料方法 | 第47-50页 |
2.2.1 克隆OsPIP1;1、OsPIP1;2和OsPIP2;2,连接到蛙卵细胞表达载体 | 第47页 |
2.2.2 cRNA的体外合成 | 第47-48页 |
2.2.3 cRNA注射并测定表达效果 | 第48页 |
2.2.4 酵母表达系统构建 | 第48-49页 |
2.2.5 数据统计 | 第49-50页 |
2.3 结果与分析 | 第50-53页 |
2.3.1 OsPIP1s和OsPIP2s在异源表达系统-蛙卵细胞中水分传输功能比较 | 第50-52页 |
2.3.2 OsPIP1s和OsPIP2s在异源表达系统-酵母中水分传输功能比较 | 第52-53页 |
2.4 讨论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-57页 |
第三章 OsPIP2;1在水稻生长中的作用 | 第57-69页 |
3.1 引言 | 第58-59页 |
3.2 材料方法 | 第59-60页 |
3.2.1 OsPIP2;1RNAi转基因水稻获得和鉴定 | 第59页 |
3.2.2 水培实验和土培实验 | 第59-60页 |
3.2.3 根系形态结构扫描与分析 | 第60页 |
3.2.4 根系水流导度测定 | 第60页 |
3.2.5 数据统计 | 第60页 |
3.3 结果与分析 | 第60-64页 |
3.3.1 OsPIP2;1RNAi材料的鉴定 | 第60-61页 |
3.3.2 OsPIP2;1对水稻生长的影响 | 第61-63页 |
3.3.3 OsPIP2;1对根系水流导度的影响 | 第63-64页 |
3.3.4 OsPIP2;1对水稻抗旱性的影响 | 第64页 |
3.4 讨论 | 第64-66页 |
3.4.1 OsPIP2;1影响水稻的生长 | 第64-65页 |
3.4.2 OsPIP2;1影响了根系的水分吸收 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-69页 |
第四章 干旱胁迫对不同氮素形态供应水稻根系水通道蛋白(AQP)表达量和活性的影响 | 第69-91页 |
4.1 引言 | 第70-71页 |
4.2 材料方法 | 第71-73页 |
4.2.1 水稻品种和培养条件 | 第71-72页 |
4.2.2 根系形态结构扫描分析和根系伸长速率测定 | 第72页 |
4.2.3 冰冻切片观察根系皮层细胞的细胞大小 | 第72页 |
4.2.4 根系RNA的提取以及定量PCR | 第72页 |
4.2.5 提取根系原生质体并测定原生质体水分渗透能力 | 第72-73页 |
4.2.6 根系水流导度的测定 | 第73页 |
4.2.7 根系ABA含量的测定 | 第73页 |
4.2.8 根系乙烯产生量的测定 | 第73页 |
4.2.9 数据统计 | 第73页 |
4.3 结果与分析 | 第73-81页 |
4.3.1 不同氮素形态和干旱胁迫对水稻地上部生物量的影响 | 第73-74页 |
4.3.2 不同氮素形态和干旱胁迫对水稻根系生长的影响 | 第74-77页 |
4.3.3 不同氮素形态和水分条件对根系AQP基因表达、根系原生质体水分渗透性和根系水流导度的影响 | 第77-79页 |
4.3.4 不同氮素形态和水分条件对根系乙烯产生的影响 | 第79-80页 |
4.3.5 不同氮素形态和水分条件对根系乙烯产生的影响 | 第80-81页 |
4.4 讨论 | 第81-85页 |
4.4.1 根系AQP表达量和活性的升高增加了水稻的抗旱性 | 第81-83页 |
4.4.2 AQP和乙烯对水稻根系生长的影响 | 第83-85页 |
参考文献 | 第85-91页 |
第五章 水稻水通道蛋白(OsPIP1;1)在CO_2传输固定过程中的作用分析 | 第91-103页 |
5.1 引言 | 第92页 |
5.2 材料方法 | 第92-93页 |
5.2.1 突变体水稻鉴定 | 第92-93页 |
5.2.2 材料水培与土培 | 第93页 |
5.2.3 水稻叶片光合速率和叶肉导度的估算 | 第93页 |
5.2.4 根系水流导度测定 | 第93页 |
5.2.5 数据统计 | 第93页 |
5.3 结果与分析 | 第93-98页 |
5.3.1 OsPIP1;1对水稻生长的影响 | 第93-96页 |
5.3.2 OsPIP1;1对水稻叶片光合速率的影响 | 第96-97页 |
5.3.3 OsPIP1;1对水稻叶片叶肉导度的影响 | 第97-98页 |
5.4 讨论 | 第98-101页 |
参考文献 | 第101-103页 |
第六章 AQP对不同氮素浓度供应水稻光合氮素利用率的调节 | 第103-119页 |
6.1 引言 | 第104-105页 |
6.2 材料方法 | 第105-106页 |
6.2.1 供试水稻品种 | 第105页 |
6.2.2 水稻培养与处理 | 第105页 |
6.2.3 测定项目 | 第105-106页 |
6.2.4 数据统计 | 第106页 |
6.3 结果与分析 | 第106-113页 |
6.3.1 不同氮素浓度供应对水稻生长的影响 | 第106页 |
6.3.2 不同氮素浓度供应对叶片光合速率的影响 | 第106-108页 |
6.3.3 不同氮素浓度供应对水稻叶片光合氮素利用率(PNUE)和叶绿体内CO_2浓度的影响 | 第108-111页 |
6.3.4 不同氮素浓度供应对叶片OsPIPs基因表达量的影响 | 第111-113页 |
6.4 讨论 | 第113-115页 |
6.4.1 高氮条件下PNUE降低和叶绿体CO_2浓度的关系 | 第113-114页 |
6.4.2 高氮条件下AQP对CO_2传输的影响 | 第114-115页 |
参考文献 | 第115-119页 |
第七章 不同氮素浓度供应对水稻根系和叶片水分状况和AQP的影响 | 第119-133页 |
7.1 引言 | 第120-121页 |
7.2 材料方法 | 第121-122页 |
7.2.1 供试水稻品种 | 第121页 |
7.2.2 水稻培养与处理 | 第121页 |
7.2.3 根系与叶片RNA提取与定量PCR | 第121页 |
7.2.4 根系与叶片原生质提取以及原生质体水分渗透性测定 | 第121页 |
7.2.5 水稻叶片叶绿体观察 | 第121页 |
7.2.6 数据统计 | 第121-122页 |
7.3 结果与分析 | 第122-127页 |
7.3.1 不同氮素浓度供应对根系AQP表达量和活性的影响 | 第122-123页 |
7.3.2 不同氮素浓度供应对叶片AQP表达量和活性的影响 | 第123-125页 |
7.3.3 不同氮素浓度供应对叶片水势的影响 | 第125-126页 |
7.3.4 OsPIP2;1对叶绿体发育的影响 | 第126-127页 |
7.4 讨论 | 第127-130页 |
7.4.1 不同氮素浓度供应处理对根系和叶片AQP的影响差异 | 第127-129页 |
7.4.2 AQP对叶绿体发育的影响以及对光合效率的影响 | 第129-130页 |
参考文献 | 第130-133页 |
全文结论 | 第133-135页 |
创新点与展望 | 第135-137页 |
附录 | 第137-145页 |
致谢 | 第145-147页 |
在读博士期间发表文章 | 第147-148页 |