| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 缩略语及专有词汇检索表 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-41页 |
| 1 引言 | 第17页 |
| 2 微生物防治植物土传病害的主要机制 | 第17-24页 |
| 2.1 拮抗作用 | 第18-20页 |
| 2.2 竞争作用 | 第20-21页 |
| 2.3 诱导植物抗性 | 第21页 |
| 2.4 抑制病原菌的群体感应 | 第21-23页 |
| 2.5 促生作用 | 第23-24页 |
| 3 生防菌株的定殖研究 | 第24-28页 |
| 3.1 根际定殖 | 第24页 |
| 3.2 影响生防菌根际定殖的因素 | 第24-26页 |
| 3.3 生防菌根际定殖的检测方法 | 第26-28页 |
| 4 番茄土传青枯病研究进展 | 第28-32页 |
| 4.1 青枯劳尔氏菌的危害 | 第28-29页 |
| 4.2 青枯病传播过程和致病因子 | 第29-30页 |
| 4.3 青枯病的防治途径 | 第30-32页 |
| 5 本课题目研究内容和技术路线 | 第32-34页 |
| 5.1 研究内容 | 第32-33页 |
| 5.2 技术路线 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-41页 |
| 第二章 菌株SQRT3的筛选、鉴定及拮抗特性研究 | 第41-65页 |
| 1 材料与方法 | 第41-49页 |
| 1.1 供试材料 | 第41-42页 |
| 1.2 实验方法 | 第42-49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-61页 |
| 2.1 拮抗菌株SQRT3的筛选和鉴定 | 第49-51页 |
| 2.2 拮抗菌SQRT3对青枯菌的拮抗效果 | 第51-54页 |
| 2.3 拮抗菌SQRT3对真菌病原菌的拮抗作用 | 第54-55页 |
| 2.4 不同培养条件下拮抗菌SQRT3的生长特性 | 第55-59页 |
| 2.5 拮抗菌SQRT3功能性代谢产物的研究 | 第59-60页 |
| 2.6 菌株SQRT3的生长曲线 | 第60-61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 4 小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第三章 B.amyloliquefaciens SQRT3对番茄青枯病的防控效果及促生作用 | 第65-89页 |
| 第一节 不同肥料配比对拮抗菌定殖的影响 | 第66-71页 |
| 1 材料与方法 | 第66-68页 |
| 1.1 供试材料 | 第66-67页 |
| 1.2 试验方法 | 第67-68页 |
| 1.3 数据统计与分析 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-71页 |
| 2.1 不同肥料配比对SQRT3在土壤中定殖的影响 | 第68-69页 |
| 2.2 不同肥料配比处理对拮抗菌SQRT3芽孢数量的影响 | 第69-70页 |
| 2.3 不同肥料配比对番茄生长的影响 | 第70-71页 |
| 第二节 拮抗菌SQRT3对番茄青枯病的防控效果 | 第71-78页 |
| 1 材料与方法 | 第71-74页 |
| 1.1 供试材料 | 第71-72页 |
| 1.2 拮抗菌SQRT3和病原菌菌悬液的制备 | 第72页 |
| 1.3 盆栽试验设计 | 第72-73页 |
| 1.4 测定指标与方法 | 第73-74页 |
| 1.5 数据统计与分析 | 第74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-78页 |
| 2.1 拮抗菌SQRT3的生防效果 | 第74-75页 |
| 2.2 番茄根际土壤拮抗菌SQRT3和青枯菌数量变化 | 第75-77页 |
| 2.3 不同处理对番茄叶片中丙二醛含量的影响 | 第77-78页 |
| 第三节 拮抗菌SQRT3对番茄的促生作用 | 第78-86页 |
| 1 材料与方法 | 第78-80页 |
| 1.1 材料 | 第78页 |
| 1.2 试验设计 | 第78页 |
| 1.3 测定指标 | 第78-79页 |
| 1.4 拮抗菌SQRT3促生物质的测定 | 第79-80页 |
| 1.5 数据统计与分析 | 第80页 |
| 2 结果与分析 | 第80-83页 |
| 2.1 拮抗菌SQRT3对番茄的促生效果 | 第80-81页 |
| 2.2 番茄根际拮抗菌SQRT3数量测定 | 第81-82页 |
| 2.3 SQRT3产生的促生物质的检测 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-85页 |
| 4 小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 第四章 B.amyloliquefaciens SQRT3植酸酶活性研究及异源表达 | 第89-111页 |
| 第一节 B.amyloliquefaciens SQRT3植酸酶活性的研究 | 第90-95页 |
| 1 材料与方法 | 第90-91页 |
| 1.1 菌株 | 第90页 |
| 1.2 主要试剂与培养基 | 第90页 |
| 1.3 试剂的配制 | 第90页 |
| 1.4 磷标准曲线的测定方法 | 第90-91页 |
| 1.5 植酸酶活测定方法 | 第91页 |
| 1.6 植酸酶的最佳反应pH | 第91页 |
| 1.7 测定不同发酵温度的植酸酶活变化 | 第91页 |
| 2 结果与分析 | 第91-95页 |
| 2.1 绘制标准曲线 | 第91-92页 |
| 2.2 发酵液中无机磷去除 | 第92-93页 |
| 2.3 植酸酶酶促反应最佳pH | 第93页 |
| 2.4 不同发酵温度对植酸酶活和菌体生长的影响 | 第93-95页 |
| 第二节 B.amyloliquefaciens SQRT3植酸酶基因的克隆与表达 | 第95-110页 |
| 1 材料与方法 | 第95-100页 |
| 1.1 菌株与质粒 | 第95页 |
| 1.2 主要试剂与培养基 | 第95页 |
| 1.3 基因组DNA和质粒DNA的提取 | 第95-96页 |
| 1.4 PCR扩增引物设计 | 第96页 |
| 1.5 phyD基因扩增 | 第96页 |
| 1.6 phyD重组表达载体的构建 | 第96-98页 |
| 1.7 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析 | 第98-100页 |
| 1.8 重组表达产物PhyD的纯化 | 第100页 |
| 1.9 重组子pET28a-phyD在植酸平板上的降解效果 | 第100页 |
| 2 结果与分析 | 第100-107页 |
| 2.1 菌株SQRT3中phyD基因的分子生物学特征 | 第100-103页 |
| 2.2 表达质粒pET28a-phyD的构建 | 第103-105页 |
| 2.3 phytase重组蛋白的诱导表达 | 第105-106页 |
| 2.4 phyD重组蛋白的纯化 | 第106页 |
| 2.5 重组子在植酸平板上的降解效果 | 第106-107页 |
| 3 讨论 | 第107-108页 |
| 4 小结 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-111页 |
| 第五章 B.amyloliquefaciens SQRT3在番茄根际的定殖 | 第111-127页 |
| 1 材料与方法 | 第111-117页 |
| 1.1 供试材料 | 第111-113页 |
| 1.2 试验方法 | 第113-116页 |
| 1.3 数据统计与分析 | 第116-117页 |
| 2 结果与分析 | 第117-123页 |
| 2.1 拮抗菌SQRT3的GFP标记和筛选 | 第117页 |
| 2.2 标记菌株中pHapⅡ的稳定性测定 | 第117-118页 |
| 2.3 标记菌株GFP表达与菌体生长之间的关系 | 第118-119页 |
| 2.4 GFP基因标记对菌株生理特性的影响 | 第119-122页 |
| 2.5 标记菌株SQRT3-GFP在番茄根际的定殖 | 第122-123页 |
| 3 讨论 | 第123-124页 |
| 4 小结 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-127页 |
| 第六章 B.amyloliquefaciens SQRT3对番茄的诱导系统抗性 | 第127-141页 |
| 1 材料与方法 | 第128-131页 |
| 1.1 供试材料 | 第128页 |
| 1.2 试验方法 | 第128-131页 |
| 1.3 统计分析 | 第131页 |
| 2 结果与分析 | 第131-137页 |
| 2.1 番茄叶片PPO和POD酶活性 | 第131-133页 |
| 2.2 丙二醛含量的测定 | 第133-134页 |
| 2.3 番茄叶片抗性相关基因的表达分析 | 第134-136页 |
| 2.4 拮抗菌SQRT3对番茄植株叶片温度的影响 | 第136-137页 |
| 3 讨论 | 第137-138页 |
| 4 小结 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-141页 |
| 全文结论 | 第141-143页 |
| 创新点 | 第143-145页 |
| 附录 | 第145-147页 |
| 博士期间(待)发表文章 | 第147-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
