| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1 血红素加氧酶研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1 植物中的血红素加氧酶 | 第13-15页 |
| 1.2 HO在植物生长发育中的作用 | 第15-16页 |
| 1.3 HO在植物响应非生物胁迫中的作用 | 第16-17页 |
| 2 高等植物启动子的研究进展 | 第17-20页 |
| 2.1 启动子的结构特点 | 第18-19页 |
| 2.2 启动子的类型 | 第19-20页 |
| 2.2.1 组成型启动子 | 第19页 |
| 2.2.2 诱导型启动子 | 第19-20页 |
| 2.2.3 组织特异性启动子 | 第20页 |
| 3 糊粉层PCD过程的研究进展 | 第20-23页 |
| 3.1 GA和ABA调控糊粉层细胞的PCD | 第21页 |
| 3.2 ROS与糊粉层PCD的关系 | 第21-23页 |
| 第二章 拟南芥血红素加氧酶1基因(HY1)启动子的表达特征分析 | 第23-51页 |
| 引言 | 第23页 |
| 1 材料与方法 | 第23-29页 |
| 1.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 1.1.2 菌株及载体 | 第23页 |
| 1.1.3 主要试剂和药品 | 第23-24页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第24页 |
| 1.2 实验方法 | 第24-29页 |
| 1.2.1 启动子的克隆、载体构建及其遗传转化 | 第24-27页 |
| 1.2.2 转基因植株的筛选与检测 | 第27-28页 |
| 1.2.3 启动子序列分析 | 第28页 |
| 1.2.4 RNA的提取、cDNA的合成及荧光定量PCR | 第28-29页 |
| 1.2.5 组织化学染色分析 | 第29页 |
| 1.2.6 GUS活性定量分析 | 第29页 |
| 1.2.7 统计分析 | 第29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-48页 |
| 2.1 HY1启动子及其缺失片段的克隆 | 第29-31页 |
| 2.2 HY1启动子及其缺失片段表达载体的构建 | 第31-32页 |
| 2.3 转基因植株的获得及鉴定 | 第32-34页 |
| 2.4 HY1启动子序列分析 | 第34-37页 |
| 2.5 pHY1转基因拟南芥的GUS表达分析 | 第37-40页 |
| 2.6 HY1启动子的缺失分析 | 第40-43页 |
| 2.7 pHY1及其缺失序列在低盐和H_2O_2处理下的GUS活性分析 | 第43-45页 |
| 2.8 pHY1及其缺失序列在缺铁条件下的GUS活性分析 | 第45-46页 |
| 2.9 pHY1及其缺失序列在Hg胁迫下的GUS活性分析 | 第46-47页 |
| 2.10 低盐、渗透胁迫和H_2O_2对RD22转录本的影响 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-51页 |
| 第三章 HO-1参与钴缓解GA诱导的小麦糊粉层PCD: H_2O_2可能是其信号分子 | 第51-61页 |
| 引言 | 第51页 |
| 1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 1.1 实验材料 | 第51页 |
| 1.2 糊粉层细胞存活率检测 | 第51页 |
| 1.3 RNA提取、cDNA合成及荧光定量PCR | 第51-52页 |
| 1.4 H_2O_2含量的测定 | 第52页 |
| 1.5 统计分析 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-58页 |
| 2.1 不同浓度的CoCl_2和CoPP预处理对GA诱导小麦糊粉层细胞PCD的影响 | 第52-54页 |
| 2.2 CoCl_2和CoPP预处理影响内源H_2O_2的含量 | 第54-55页 |
| 2.3 H_2O_2预处理对HO-1表达及GA诱导的PCD的影响 | 第55-57页 |
| 2.4 DPI预处理降低了HO-1的表达并增强了钴减缓的PCD | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-61页 |
| 全文结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
