| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-12页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 1 前言 | 第15-24页 |
| ·逆境与植物响应 | 第15-16页 |
| ·逆境对植物生长的影响 | 第15-16页 |
| ·植物对逆境的响应 | 第16页 |
| ·细胞分裂和膨大及其对逆境的响应 | 第16-20页 |
| ·细胞分裂及细胞周期相关基因 | 第16-18页 |
| ·细胞膨大及相关基因 | 第18-19页 |
| ·胁迫对细胞分裂、膨大及相关基因表达的影响 | 第19-20页 |
| ·H_2O_2和谷胱甘肽在调控植物生长中的作用 | 第20-22页 |
| ·H_2O_2在调控植物生长方面的作用 | 第20-21页 |
| ·谷胱甘肽对植物生长的作用 | 第21-22页 |
| ·谷胱甘肽对细胞周期的作用 | 第21页 |
| ·谷胱甘肽在增强植物抗性方面的作用 | 第21-22页 |
| ·本研究的意义 | 第22-24页 |
| 2 不同温度对黄瓜叶片光合作用、细胞分裂及细胞周期、膨大基因表达的影响 | 第24-36页 |
| ·材料与方法 | 第25-29页 |
| ·材料培养与实验设计 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-29页 |
| ·气体交换参数测定 | 第25-26页 |
| ·叶绿素荧光成像分析 | 第26页 |
| ·Rubisco活性的测定 | 第26页 |
| ·PGK和GAPDH活性的测定 | 第26-27页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第27页 |
| ·细胞核DNA相对含量分析 | 第27-28页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成及RT-PCR分析 | 第28-29页 |
| ·总RNA的提取 | 第28页 |
| ·cDNA的制备 | 第28页 |
| ·荧光实时定量PCR(RT-PCR)分析 | 第28-29页 |
| ·统计分析 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-34页 |
| ·不同温度对气体交换参数的影响 | 第29页 |
| ·不同温度对叶绿素荧光参数的影响 | 第29-31页 |
| ·不同温度对卡尔文循环相关酶活性的影响 | 第31-32页 |
| ·不同温度对Rubisco初始活性、总活性和活化率的影响 | 第31页 |
| ·不同温度对PGK和GAPDH活性的影响 | 第31-32页 |
| ·温度对黄瓜叶片细胞分裂的影响 | 第32-33页 |
| ·温度对细胞周期及膨大相关基因表达的影响 | 第33页 |
| ·不同温度对谷胱甘肽含量及GSH/GSSG比值的影响 | 第33-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 3 不同苗期生长温度对温度胁迫下黄瓜生长和光合作用的影响 | 第36-46页 |
| ·材料与方法 | 第36-39页 |
| ·材料培养和实验设计 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-39页 |
| ·生长指标的测定 | 第37页 |
| ·气体交换参数测定 | 第37页 |
| ·Rubisco活性的测定 | 第37页 |
| ·FBPase活性的测定 | 第37-38页 |
| ·PGK和GAPDH活性的测定 | 第38页 |
| ·H_2O_2含量测定 | 第38-39页 |
| ·丙二醛(MDA)含量测定 | 第39页 |
| ·统计分析 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-44页 |
| ·生长指标的迁移 | 第39-40页 |
| ·气体交换参数的变化 | 第40-41页 |
| ·不同苗期生长温度对卡尔文循环相关酶活性的影响 | 第41-43页 |
| ·不同苗期生长温度对Rubisco初始活性、总活性和活化率的影响 | 第41-42页 |
| ·不同苗期生长温度对FBPase、PGK和GAPDH活性的影响 | 第42-43页 |
| ·不同苗期生长温度对H_2O_2和MDA含量的影响 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-46页 |
| 4 H_2O_2在调控黄瓜光合机构温度适应性中的作用 | 第46-59页 |
| ·材料与方法 | 第46-49页 |
| ·材料培养和实验设计 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-49页 |
| ·生长指标的测定 | 第47页 |
| ·气体交换参数测定及A/Ci曲线制作 | 第47页 |
| ·H_2O_2含量测定 | 第47页 |
| ·Rubisco活性和含量的测定 | 第47-48页 |
| ·FBPase活性的测定 | 第48页 |
| ·PGK和GAPDH活性的测定 | 第48页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第48页 |
| ·抗坏血酸含量的测定 | 第48页 |
| ·丙二醛(MDA)活性的测定 | 第48页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成及RT-PCR分析 | 第48-49页 |
| ·总RNA的提取 | 第48-49页 |
| ·cDNA的制备 | 第49页 |
| ·荧光实时定量PCR(RT-PCR)分析 | 第49页 |
| ·统计分析 | 第49页 |
| ·结果与分析 | 第49-57页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对黄瓜生长的影响 | 第49-51页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对光合作用的影响 | 第51-52页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对V_(cmax)、J_(max)的影响 | 第52页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对黄瓜光合作用相关酶活性的影响 | 第52-53页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对Rubisco初始活性、总活性、活化率和含量的影响 | 第52页 |
| ·H_2O_2和DMTU处理对FBPase、PGK和GAPDH活性的影响 | 第52-53页 |
| ·外源H_2O_2和DMTU处理对黄瓜内源H_2O_2含量的影响 | 第53-54页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对MDA含量的影响 | 第54-55页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对谷胱甘肽和抗坏血酸的影响 | 第55-57页 |
| ·H_2O_2、DMTU处理对相关基因表达的影响 | 第57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| 5 总结和展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-77页 |
| 作者简历 | 第77页 |
