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在不同宿主中表达链霉菌磷脂酶D的研究

摘要第1-6页
Abstract第6-10页
第一章 文献综述第10-21页
   ·磷脂酶D及其催化机理第10-13页
     ·磷脂酶D第10页
     ·磷脂酶D的初级和多级结构第10-12页
     ·磷脂酶D的反应催化机理第12-13页
   ·磷脂酶D的酶活检测方法第13-14页
   ·底物识别和特异性第14-16页
     ·PHLDAxExxxR氨基酸序列第14-15页
     ·关键氨基酸位点W187,Y191,Y385第15页
     ·GS/GG模块第15-16页
   ·PLD异源表达研究现状第16-17页
     ·PLD在大肠杆菌系统中的表达第16页
     ·PLD在枯草芽孢杆菌中的表达第16页
     ·PLD在链霉菌中的表达第16-17页
   ·毕赤酵母表达系统第17页
   ·解脂耶氏表达系统第17-19页
   ·研究目的及内容第19-21页
第二章 磷脂酶D在毕赤酵母中的异源表达第21-38页
   ·引言第21页
   ·材料和仪器第21-24页
     ·仪器与实验设备第21-22页
     ·相关酶和生物试剂盒第22-23页
     ·培养基第23页
     ·缓冲液与试剂的配置第23页
     ·菌种和质粒第23页
     ·磷脂酶D基因第23-24页
     ·引物设计第24页
     ·抗生素配制第24页
   ·实验方法第24-31页
     ·磷脂酶D基因密码子的优化第24-27页
     ·糖基化位点的预测第27-28页
     ·糖基化位点定点突变第28-30页
     ·PLD信号肽的去除第30页
     ·毕赤酵母的转化第30页
     ·PLD在Pichia pastoris中表达的基因验证第30-31页
     ·PLD在毕赤酵母中的蛋白表达验证第31页
     ·PLD的酶活测定第31页
   ·实验结果第31-37页
     ·pIC9K-PLD重组质粒的构建第31-33页
     ·PLD在毕赤酵母中的生长第33-35页
     ·PLD在Pichia pastoris中的表达验证第35页
     ·PLD在Pichia pastoris中的表达第35-36页
     ·PLD在毕赤酵母中的表达活性第36-37页
   ·小结第37-38页
第三章 PLD在解脂耶氏酵母中的表达第38-49页
   ·引言第38页
   ·材料和仪器第38-39页
     ·设备仪器第38页
     ·相关酶和生物试剂盒第38页
     ·培养基第38页
     ·缓冲液与试剂的配制第38-39页
     ·菌种和质粒第39页
     ·相关引物设计第39页
   ·实验方法第39-42页
     ·表达质粒的构建第39-40页
     ·解脂耶氏酵母的转化第40-41页
     ·PLD在解脂耶氏酵母中的表达验证第41页
     ·PLD在解脂耶氏酵母中的表达第41-42页
   ·实验结果第42-48页
     ·去除自身信号肽/携带自身信号肽pINA系列表达质粒的构建第42-43页
     ·pINA-N205286Q表达质粒的构建第43页
     ·PLD在解脂耶氏酵母中的表达第43-48页
   ·小结第48-49页
第四章 PLD在大肠杆菌中的表达第49-59页
   ·引言第49页
   ·材料和仪器第49-50页
     ·实验仪器第49页
     ·培养基第49-50页
     ·菌种和质粒第50页
   ·实验方法第50-51页
     ·引物设计第50页
     ·大肠杆菌表达质粒的重组构建第50页
     ·Rosseta感受态的制备第50-51页
     ·大肠杆菌转化第51页
     ·PLD在大肠杆菌中的诱导表达第51页
     ·大肠杆菌生长曲线的绘制第51页
   ·实验结果第51-58页
     ·大肠杆菌重组表达质粒的构建第51-52页
     ·阳性克隆子的筛选和验证第52-53页
     ·pET-22PLD在大肠杆菌中的表达第53-54页
     ·pET-28PLD在大肠杆菌中的表达第54-55页
     ·PLD在大肠杆菌中诱导表达的温度确定第55页
     ·大肠杆菌生长曲线的绘制第55-56页
     ·PLD在大肠杆菌中的高密度发酵第56-58页
   ·小结第58-59页
第五章 PLD在链霉菌中的表达第59-74页
   ·引言第59-60页
     ·红霉素抗性启动子第59页
     ·P Sau3A组成型启动子第59-60页
   ·实验材料和仪器第60-61页
     ·实验仪器第60页
     ·培养基第60-61页
     ·试剂的配制第61页
     ·菌株和质粒第61页
   ·实验方法第61-66页
     ·P Sau3A启动子的合成第61页
     ·PermE~*启动子的获得第61-62页
     ·pNW-S1质粒的改造第62-63页
     ·pNW-S3和pNW-S4质粒的构建第63-64页
     ·PLD重组表达质粒的构建第64-65页
     ·链霉菌重组质粒的转化第65-66页
   ·实验结果第66-72页
     ·pNW-S2质粒的构建第66页
     ·Sau3A启动子的获得第66-67页
     ·ermE~*启动子的获得第67页
     ·pNW-S3和pNW-S4质粒的构建第67页
     ·PLD目的基因的连接第67-68页
     ·TK24的转化第68页
     ·阳性克隆的验证第68-69页
     ·转化子的发酵和PLD的酶活测定第69页
     ·转化子的发酵优化第69-70页
     ·各项生长参数的测定第70-72页
   ·结论第72-74页
第六章 总结第74-76页
   ·结论第74-75页
   ·展望第75-76页
参考文献第76-81页
致谢第81页

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