| 目录 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 上篇 文献综述 | 第16-59页 |
| 第一章 卵菌和植物协同进化的互作模式 | 第17-31页 |
| 1 病原卵菌 | 第18页 |
| 2 引起植物免疫反应的卵菌PAMPs及其他激发子 | 第18-20页 |
| ·GP42 | 第18-19页 |
| ·CBEL | 第19页 |
| ·INF1 | 第19-20页 |
| ·NLPs | 第20页 |
| 3 卵菌分泌的效应分子 | 第20-23页 |
| ·分泌到胞外的卵菌效应分子 | 第21-23页 |
| ·分泌到胞内的卵菌效应分子 | 第23页 |
| 4 卵菌效应分子激发的免疫反应和植物的抗病基因 | 第23-25页 |
| ·抗病基因和无毒基因的互作 | 第23-24页 |
| ·植物的抗病基因 | 第24-25页 |
| ·抗病基因和无毒基因的协同进化 | 第25页 |
| 5 小结 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-31页 |
| 第二章 植物病原卵菌无毒基因的研究进展 | 第31-59页 |
| 1 植物病原卵菌无毒基因克隆方法概述 | 第31-35页 |
| ·植物病原卵菌无毒基因的遗传特性研究和连锁标记的鉴定 | 第32-33页 |
| ·植物病原卵菌无毒基因的克隆方法 | 第33-35页 |
| 2 已经克隆的植物病原卵菌无毒基因 | 第35-42页 |
| ·Phytophthora sojae中已经克隆的无毒基因 | 第35-38页 |
| ·Phytophthora infestans中已经克隆的无毒基因 | 第38-40页 |
| ·Hyaloperonospora parasitica中已经克隆的无毒基因 | 第40-42页 |
| 3 植物病原卵菌无毒基因的结构概况 | 第42-46页 |
| ·N端结构概况 | 第42-43页 |
| ·C端结构概况 | 第43页 |
| ·无毒蛋白的蛋白结构分析 | 第43-46页 |
| 4 植物病原卵菌无毒基因的转录特征 | 第46页 |
| 5 植物病原卵菌无毒基因的毒性功能 | 第46-49页 |
| ·PsAvr1b可以抑制BAX诱导的细胞死亡 | 第47页 |
| ·PsAvr3b是一个调控植物免疫系统的Nudix水解酶 | 第47-48页 |
| ·PiAvr3a互作并稳定马铃薯E3连接酶CMPG1来调控植物免疫系统 | 第48页 |
| ·PiAvrblb2阻碍了一种植物蛋白酶的分泌从而破坏了植物免疫反应 | 第48-49页 |
| ·ATR1和ATR13可以抑制植物免疫反应 | 第49页 |
| 6 植物病原卵菌无毒基因的变异机制 | 第49-52页 |
| ·基因缺失 | 第49-50页 |
| ·序列变异 | 第50页 |
| ·转录沉默 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 下篇 研究内容 | 第59-126页 |
| 第一章 大豆疫霉无毒基因PsAvr5的克隆 | 第60-84页 |
| 摘要 | 第60页 |
| ABSTRACT | 第60-62页 |
| 1 材料与方法 | 第62-66页 |
| ·供试菌株和大豆鉴别寄主 | 第62页 |
| ·大豆疫霉菌F_1和F_2后代的产生 | 第62页 |
| ·CAPs标记分析 | 第62-63页 |
| ·载体构建,大豆疫霉遗传转化和植物基因枪瞬时转化 | 第63-64页 |
| ·基因组DNA的提取和转化子的筛选 | 第64-65页 |
| ·Quantitative real-time PCR分析 | 第65页 |
| ·菌株毒力表型的测定 | 第65-66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-79页 |
| ·遗传作图和菌株的单体型分析推断PsAvr3a和PsAvr5是等位基因 | 第66-68页 |
| ·PsAvr3a~(P6497)在Rps5大豆叶片上引起特异性细胞死亡 | 第68-70页 |
| ·PsAvr3a~(P6497)基因过表达转化子的获得 | 第70-71页 |
| ·PsAvr3a~(P6497)基因过表达转化子菌株在含有Rps3a和Rps5的大豆鉴别寄主上表现为无毒性状 | 第71-74页 |
| ·PsAvr3a~(P6497)基因沉默转化子的获得 | 第74-76页 |
| ·PsAvr3a~(P6497)基因沉默转化子菌株在含有Rps3a和Rps5的大豆鉴别寄主上不表现为无毒性状 | 第76-79页 |
| 3 讨论 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-84页 |
| 第二章 大豆疫霉无毒基因PsAvr1c克隆的初探 | 第84-110页 |
| 摘要 | 第84-85页 |
| ABSTRACT | 第85-87页 |
| 1 材料与方法 | 第87-92页 |
| ·供试菌株和大豆鉴别寄主 | 第87页 |
| ·大豆疫霉菌毒力表型的测定 | 第87-88页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第88-89页 |
| ·CAPs标记分析 | 第89页 |
| ·RNA的提取和cDNA的合成 | 第89-90页 |
| ·大豆疫霉菌F_1和F_2后代的产生 | 第90页 |
| ·遗传连锁分析 | 第90页 |
| ·无毒池和毒性池的构建及测序分析 | 第90-92页 |
| ·F_2后代的选取 | 第90页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第90-91页 |
| ·池的构建 | 第91页 |
| ·测序数据的分析 | 第91-92页 |
| 2 结果与分析 | 第92-104页 |
| ·大豆疫霉亲本菌株的毒力表型测定 | 第92页 |
| ·杂合F_1后代的毒力表型测定 | 第92-93页 |
| ·F_2代群体毒性特征的遗传分析 | 第93-95页 |
| ·大豆疫霉无毒基因PsAvr1c候选基因的分析 | 第95-101页 |
| ·具有序列多态性特征的PsAvr1c候选基因的分析 | 第95-100页 |
| ·具有转录多态性特征的PsAvr1c候选基因的分析 | 第100-101页 |
| ·无毒池和毒性池的全基因组测序分析 | 第101-104页 |
| ·基因组DNA的分析 | 第102-103页 |
| ·无毒池和毒性池的构建 | 第103-104页 |
| ·测序结果的分析 | 第104页 |
| 3 讨论 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-110页 |
| 第三章 中国大豆疫霉群体中Avr3c的多态性研究 | 第110-126页 |
| 摘要 | 第110页 |
| ABSTRACT | 第110-113页 |
| 1 材料与方法 | 第113-114页 |
| ·供试菌株 | 第113页 |
| ·毒力表型的测定 | 第113页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第113-114页 |
| ·目的片段的扩增与测序 | 第114页 |
| ·正向选择分析 | 第114页 |
| 2 结果与分析 | 第114-119页 |
| ·供试菌株 | 第114-115页 |
| ·Avr3c目的片段的扩增结果 | 第115-116页 |
| ·Avr3c的测序结果与多态性分析 | 第116-118页 |
| ·向选择分析 | 第118-119页 |
| 3 讨论 | 第119-122页 |
| 参考文献 | 第122-126页 |
| 附录一 PsAvr5研究中用到的大豆疫霉菌株 | 第126-128页 |
| 附录二 PsAvr1c候选基因的CAPs标记信息 | 第128-130页 |
| 附录三 P.sojae Avh基因的RT-PCR引物 | 第130-134页 |
| 全文总结 | 第134-136页 |
| 攻读博士学位期间发表的研究论文 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
