| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-32页 |
| ·原始卵泡的形成与发育 | 第10-14页 |
| ·卵原细胞分化与卵包囊形成 | 第10-12页 |
| ·卵包囊解体与原始卵泡的形成 | 第12-14页 |
| ·调控原始卵泡形成的因子 | 第14-21页 |
| ·生长因子及相关通路 | 第14-18页 |
| ·转录因子 | 第18页 |
| ·激素 | 第18-21页 |
| ·减数分裂进程与原始卵泡形成 | 第21页 |
| ·细胞粘附与原始卵泡形成 | 第21页 |
| ·卵母细胞丢失 | 第21-23页 |
| ·原始卵泡的激活 | 第23-25页 |
| ·MICRORNA与生殖 | 第25-30页 |
| ·研究内容及研究意义 | 第30-32页 |
| 第2章 材料和方法 | 第32-44页 |
| ·实验材料 | 第32-34页 |
| ·试剂 | 第32-33页 |
| ·细胞系 | 第33页 |
| ·实验动物 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-42页 |
| ·组织包埋与石蜡切片 | 第34-36页 |
| ·胎鼠卵巢石蜡包埋 | 第34-35页 |
| ·免疫组织化学 | 第35-36页 |
| ·Western blot | 第36页 |
| ·胎鼠卵巢组织体外培养 | 第36-37页 |
| ·体外培养卵巢组织转染 | 第37页 |
| ·TUNEL检测卵巢组织中细胞凋亡水平 | 第37-38页 |
| ·卵母细胞与卵巢体细胞的分离 | 第38页 |
| ·mRNA与miRNA的Q-PCR检测 | 第38-40页 |
| ·miRNA与mRNA芯片分析 | 第40页 |
| ·雌激素处理卵巢组织 | 第40页 |
| ·Luciferase报告载体构建与Luciferase荧光分析 | 第40-41页 |
| ·miRNA原位杂交 | 第41-42页 |
| ·活细胞实时摄影 | 第42页 |
| ·数据分析 | 第42-44页 |
| ·切片统计标准 | 第42-43页 |
| ·卵母细胞和各级卵泡计数标准 | 第43页 |
| ·统计分析 | 第43-44页 |
| 第3章 研究结果和讨论 | 第44-94页 |
| ·差异表达MIRNA的筛选 | 第44-52页 |
| ·背景介绍 | 第44-45页 |
| ·原始卵泡的形成过程 | 第45-47页 |
| ·miRNA芯片的结果和验证 | 第47-50页 |
| ·小结与讨论 | 第50-52页 |
| ·MIRNA功能的筛选 | 第52-61页 |
| ·建立原始卵泡阶段筛选miRNA功能的平台 | 第52-59页 |
| ·小结与讨论 | 第59-61页 |
| ·功能MIRNA的下游基因及相关通路 | 第61-70页 |
| ·构建miRNA下游预测软件 | 第61-65页 |
| ·验证SMESE的预测准确率 | 第65-67页 |
| ·SMESE预测基因的GO和PPI分析 | 第67-69页 |
| ·小结与讨论 | 第69-70页 |
| ·雌激素通过MIR-200A~*-CDH-2调控原始形成 | 第70-87页 |
| ·miR-200a~*在卵巢中调控Cdh-2的表达 | 第70-73页 |
| ·雌激素调控miR-200a~*和Cdh-2的表达 | 第73-78页 |
| ·体细胞缺失Cdh-2抑制原始卵泡形成 | 第78-85页 |
| ·小结与讨论 | 第85-87页 |
| ·MIR-153调控卵母细胞存活 | 第87-94页 |
| ·miR-153在原始卵泡形成阶段调控Caspase-2的表达 | 第87-91页 |
| ·miR-153调控Caspase家族的表达 | 第91-94页 |
| 第4章 结论 | 第94-98页 |
| 参考文献 | 第98-116页 |
| 附录1 参加会议情况 | 第116-118页 |
| 附录2 电英文对照表 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120-122页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的成果 | 第122页 |
