| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写表 | 第8-9页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-22页 |
| ·淀粉的分类和基本性质 | 第11页 |
| ·淀粉的生物合成 | 第11-12页 |
| ·淀粉合成关键酶 | 第12-17页 |
| ·ADP-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase) | 第12-14页 |
| ·淀粉合成酶(SS) | 第14-15页 |
| ·淀粉分支酶(SBE) | 第15页 |
| ·淀粉去分支酶(DBE) | 第15-16页 |
| ·淀粉磷酸化酶(SP) | 第16-17页 |
| ·淀粉合成相关基因的表达调控 | 第17-20页 |
| ·时空表达的调控 | 第17-18页 |
| ·诱导表达的调控 | 第18-19页 |
| ·高等植物启动子研究现状 | 第19-20页 |
| ·研究目的和意义 | 第20-22页 |
| ·实验技术路线 | 第22页 |
| 2. 材料和方法 | 第22-42页 |
| ·实验材料 | 第22-24页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·质粒载体及菌种 | 第22页 |
| ·主要试剂和试剂盒 | 第22-23页 |
| ·主要仪器 | 第23页 |
| ·主要溶液 | 第23页 |
| ·主要培养基 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-42页 |
| ·玉米材料的处理 | 第24页 |
| ·半定量RT-PCR | 第24-26页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第26-27页 |
| ·Brittle-2基因启动子的克隆 | 第27-31页 |
| ·原始表达载体的改造 | 第31-33页 |
| ·对照载体和瞬时表达载体的构建 | 第33-37页 |
| ·Brittle-2基因启动子活性的验证 | 第37-39页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的构建 | 第39-42页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的胚乳瞬时表达 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-52页 |
| ·Brittle-2基因表达模式的半定量RT-PCR分析 | 第42-45页 |
| ·总RNA提取效果的检测 | 第42-43页 |
| ·半定量RT-PCR最佳循环数的确定 | 第43页 |
| ·cDNA模板均一化 | 第43-44页 |
| ·Brittle-2基因在不同处理下的半定量RT-PCR结果 | 第44-45页 |
| ·Brittle-2基因表达模式的实时荧光定量PCR分析 | 第45-47页 |
| ·标准曲线的建立 | 第45-46页 |
| ·Brittle-2基因在不同处理下的实时荧光定量PCR结果 | 第46-47页 |
| ·Brittle-2基因启动子的克隆及序列分析 | 第47-49页 |
| ·Brittle-2基因启动子的克隆 | 第47-48页 |
| ·Brittle-2基因启动子的基序分布 | 第48-49页 |
| ·Brittle-2基因启动子活性验证 | 第49-50页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的构建 | 第50-51页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失片段的获得 | 第50页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的构建 | 第50-51页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的测序鉴定 | 第51页 |
| ·Brittle-2基因启动子不同缺失表达载体的胚乳瞬时表达 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-57页 |
| ·Brittle-2基因受蔗糖和ABA的协同诱导 | 第52-53页 |
| ·Brittle-2基因的组织特异性和时空特异性 | 第53-54页 |
| ·Brittle-2基因启动子序列分析 | 第54-55页 |
| ·Brittle-2基因启动子核心区域的鉴定 | 第55页 |
| ·后续实验的研究思路 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
