| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| ·植物叶色突变体 | 第11-16页 |
| ·叶色突变体的研究进展 | 第11-12页 |
| ·叶色突变体的应用探讨 | 第12-14页 |
| ·小麦叶色突变体的研究进展 | 第14-16页 |
| ·植物蛋白质组学研究进展 | 第16-22页 |
| ·双向差异凝胶电泳技术及其在植物蛋白质组学中的应用 | 第17-20页 |
| ·植物叶绿体蛋白质组学研究进展 | 第20-22页 |
| 第二章 小麦叶色突变体叶片总蛋白 2D-DIGE 分析 | 第22-39页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·主要仪器和分析软件 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-29页 |
| ·材料准备 | 第22-23页 |
| ·小麦叶片总蛋白的提取、定量及纯化 | 第23-25页 |
| ·小麦叶片总蛋白 2D-DIGE 操作 | 第25-29页 |
| ·实验结果与分析 | 第29-36页 |
| ·总蛋白 2D-DIGE | 第29-30页 |
| ·总蛋白中差异表达蛋白的质谱鉴定 | 第30-36页 |
| ·讨论 | 第36-39页 |
| ·Mt6172 光合作用严重受阻 | 第36页 |
| ·Mt6172 叶绿体的抗氧化能力下降 | 第36-37页 |
| ·Mt6172 的能量代谢途径受到突变的影响 | 第37页 |
| ·Mt6172 的叶绿体 mRNA 编辑受到突变的影响 | 第37-39页 |
| 第三章 小麦叶色突变体叶绿体蛋白 2D-DIGE 分析 | 第39-54页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·植物材料 | 第39页 |
| ·主要试剂 | 第39页 |
| ·主要仪器和分析软件 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| ·材料准备 | 第39页 |
| ·小麦叶绿体的分离 | 第39-40页 |
| ·小麦叶绿体蛋白的提取、定量及纯化 | 第40-41页 |
| ·小麦叶绿体蛋白 2D-DIGE 操作 | 第41页 |
| ·实验结果与分析 | 第41-51页 |
| ·小麦叶绿体分离方法的改进效果 | 第41-42页 |
| ·小麦叶绿体蛋白提取方法的改进效果 | 第42-43页 |
| ·小麦叶绿体蛋白 2D-DIGE | 第43-44页 |
| ·叶绿体蛋白差异表达蛋白的质谱鉴定 | 第44-51页 |
| ·讨论 | 第51-54页 |
| ·小麦叶绿体蛋白提取方法改进的必要性 | 第51页 |
| ·光系统 II 蛋白复合体的缺失可能是 Mt6172 白化突变的重要原因 | 第51-52页 |
| ·Mt6172 的叶绿体膜转运系统可能存在缺失 | 第52-53页 |
| ·Mt6172 叶绿体的抗氧化能力下降 | 第53-54页 |
| 第四章 小麦叶色突变体光合特性及基因表达调控模式分析 | 第54-66页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·植物材料 | 第54页 |
| ·主要试剂 | 第54页 |
| ·主要仪器 | 第54页 |
| ·主要分析软件 | 第54页 |
| ·光反应差异表达相关基因小麦 ESTs 序列和 qPCR 引物的获得 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-58页 |
| ·材料准备 | 第54-55页 |
| ·小麦叶色突变体叶绿素荧光动力学参数测定 | 第55页 |
| ·小麦幼苗叶片总 RNA 提取 | 第55-57页 |
| ·RNA 反转录 | 第57页 |
| ·实时荧光定量 PCR（qPCR） | 第57-58页 |
| ·实验结果与分析 | 第58-63页 |
| ·差异表达相关基因的表达分析 | 第58-62页 |
| ·黄化苗复绿过程中叶绿素荧光动力学参数的测定 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-66页 |
| ·不同生长条件下光合膜蛋白复合体的表达调控模式 | 第63-64页 |
| ·突变体 Mt6172 中 PSII 基本无活性 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 附录 | 第75-80页 |
| 后记 | 第80-81页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果清单 | 第81页 |
